Salīdzinošs pētījums par kurkumīna un tā nanodaļiņu ietekmi uz Nīlas tilapijas (Oreochromis Niloticus) augšanu, imunitāti un karstuma stresa izturību

Šajā pētījumā tika novērtēta uztura bagātinātāju ar brīvo vai nano-kurkumīnu ietekme uz Nīlas tilapijas (Oreochromis niloticus) augšanas veiktspēju, imūno stāvokli un karstuma stresa izturību. Tika sagatavotas septiņas izonitrogēnas (28 procenti olbaltumvielu) un izokaloriskas (445 kcal/100 g DM) diētas. Sešas diētas tika papildinātas ar trīs līmeņiem nanokurkumīna (50 (CN50), 100 (CN100), 200 (CN200) mg kg-1 diēta) vai brīvā kurkumīna (50 (C50), 100 (C100), 200 (C200). ) mg kg-1 diēta), un kontroles diēta tika atstāta bez piedevas (CON). Zivis (13,54 ± 0,32 g) (vidēji ± SD) tika barotas ar eksperimentālo diētu 65 dienas.

Pēc barošanas izmēģinājuma zivis tika pakļautas akūtam karstuma stresam, pakāpeniski paaugstinot ūdens temperatūru no 25 līdz 40 grādiem 3 stundu laikā. Pēc tam zivis tika pakļautas 40 grādiem 4 stundas. Rezultāti atklāja nano-kurkumīna pārākumu pār tā brīvo formu, uzlabojot augšanas veiktspēju, ar augstākajiem rezultātiem, kas iegūti CN100, kam sekoja CN200. Tikai karstuma stress, nevis eksperimentālās diētas, palielināja trombocītu skaitu, vidējo korpuskulāro tilpumu (MCV), vidējo korpuskulāro hemoglobīna (MCH), leikocītu un neitrofilu skaitu, bet limfocītu skaits samazinājās.

Pastāv cieša saikne starp karstuma stresa izturību un imunitāti. Karstuma stress var izraisīt daudzas ķermeņa problēmas, piemēram, augstu temperatūru, zemu temperatūru, badu un hipoksiju. Šīs problēmas var izraisīt izmaiņas intracelulārajā un ārpusšūnu vidē, kas izraisa ķermeņa reakciju uz stresu. Pēc ilga adaptācijas perioda ķermenis var attīstīt spēcīgāku izturību pret karstuma stresu. Tajā pašā laikā karstuma stress var ietekmēt arī imunitāti. Pēc ilgstoša karstuma stresa zināmā mērā tiks bojāta organisma imūnsistēma. Karstuma stresa izraisītais imūnšoks palielina inficēšanās risku pacientiem un samazina imūno šūnu darbību. Tomēr mērens karstuma stress var uzlabot imunitāti, jo tas aktivizē ķermeņa pašatveseļošanos un imūnsistēmu. Tāpēc mērens karstuma stress var stiprināt organisma pretestību un imunitāti, kā arī uzlabot organismu pielāgošanās spēju un izdzīvošanas līmeni sarežģītā vidē. Bez bioloģijas mums, cilvēkiem, būtu jāpievērš uzmanība arī imunitātes uzlabošanai. Cistanche būtiski uzlabo imunitāti. Cistanche ir bagāta ar dažādām antioksidantu vielām, piemēram, C vitamīnu, C vitamīnu, karotinoīdiem utt. Šīs sastāvdaļas var attīrīt brīvos radikāļus, samazināt oksidatīvo stresu un uzlabot imūnsistēmas pretestību.

Noklikšķiniet uz cistanche deserticola papildinājuma

CN50 un CN100 grupas uzrādīja zemāku aknu enzīmu (alanīna aminotransferāzes (ALT) un aspartāta aminotransferāzes (AST)) aktivitāti nekā citas ārstēšanas metodes, savukārt C200 nodrošināja augstāko šo enzīmu aktivitāti. Augstākais imūnglobulīna (IgM) līmenis tika noteikts CN100, CN200, C100 un C200, kam sekoja CN50. C200 grupa uzrādīja augstāku 3. un 4. komplementa līmeni (attiecīgi C3 un C4) nekā citi ārstēšanas veidi. C50 un CON grupas sniedza zemākās IgM, C3 un C4 vērtības. Kortizola līmenis bija ievērojami zemāks CN50 un CN100 grupās, salīdzinot ar citām grupām. Pēc karstuma stresa palielinājās ALAT, ASAT, IgM, C3, C4, kortizola un glikozes līmenis. Tādējādi nano-kurkumīns ir efektīvāks par tā brīvo formu, lai uzlabotu izturību pret karstuma stresu, izraisītu iedzimtu imunitāti, samazinātu stresa rādītājus un veicinātu Nīlas tilapijas augšanas veiktspēju ar vislabāko koncentrāciju 100 mg kg-1 diētā.

Otra izplatītākā zivju suga pasaulē pēc karpas ir Nīlas tilapija (Oreochromis niloticus) 1,2. Tilapijas pašlaik kultivē vairāk nekā 120 valstīs visā pasaulē2. Tilapijas ražošana pasaulē pieauga no mazāk nekā 0,5 miljoniem metrisko tonnu (MMT) 20. gadsimta 90. gadu sākumā līdz 6,03 MMT 2018. gadā ar vidējo gada pieauguma ātrumu 13,5 procenti 2. Tomēr intensīvā tilapijas audzēšana padara to jutīgu pret dažādiem stresa faktoriem, piemēram, karstuma stress (HS), kas ir galvenās globālās sasilšanas sekas3. Lai gan Nīlas tilapija var izturēt plašu temperatūru diapazonu (optimālais temperatūras diapazons ir 25–28 grādi), ūdens temperatūra, kas pārsniedz optimālo diapazonu, var nomākt imūnsistēmu un sabojāt tās antioksidantu reakciju4,5. HS nomāc imūnsistēmu, izmantojot šūnu mediētas un humorālas imūnās atbildes6. Piemēram, ir konstatēts, ka HS samazina imūnglobulīnu (IgG un IgM) līmeni7.

HS8 laikā tiek ietekmēti arī primārie imūnās atbildes rādītāji (baltās asins šūnas, sarkanās asins šūnas, hemoglobīns un glikoze). Strupajam snuķim (Megalobrama amblycephala Yih) pēc 6 stundu ilgas karstuma stresa bija paaugstināts lizocīms, alternatīvās komplementa aktivitātes, kopējais proteīna un Ig M līmenis, tāpēc šie parametri samazinājās9. Līdz ar to karstuma stress var negatīvi ietekmēt zivju veselību, izraisot augšanas regresiju un augstu Fsh mirstību10. Zivju aizsardzības mehānismu stiprināšana, uzturā ievadot imūnstimulatorus, ir kļuvusi par prioritāti stresa faktoru kontrolēšanā akvakultūrā11. Starp dažādiem imūnstimulatoriem ārstniecības augi satur ķīmiskas sastāvdaļas, kas uzlabo imunitāti, izmantojot specifiskus vai nespecifiskus ceļus, padarot dzīvnieku izturīgāku pret ārējiem stresa faktoriem12.

Kurkumīns ir oranždzeltena, hidrofoba, bioaktīva augu sastāvdaļa un polifenola savienojums, kas iegūts no kurkuma (Curcuma longa). Galvenās kurkumīna aktīvās sastāvdaļas ir diferuloilmetāns (77 procenti), demetoksikurkumīns (17 procenti) un bisdemetoksikurkumīns (6 procenti)13. Pārsteidzoši, kurkumīnam piemīt pretvīrusu, pretsēnīšu, pretiekaisuma, antioksidanta un pretvēža īpašības14–17. Tādējādi kurkumīns var stimulēt iedzimto imūnsistēmu fsh18,19. Vairāki pētījumi ir parādījuši kurkumīna kā potenciāla imūnstimulatora un antioksidanta kandidāta labvēlīgo ietekmi dažādu zivju sugu uzturā20–26. Tomēr slikta šķīdība ūdenī un biopieejamība ierobežo kurkumīna praktisko pielietojumu13.

Nesen nano-kurkumīns ir izstrādāts, lai izvairītos no kurkumīna sliktajām piegādes īpašībām un uzlabotu tā terapeitisko iedarbību27. Atšķirībā no kurkumīna, kas veido kunkuļus, jo tam ir zema šķīdība ūdenī, nano kurkumīns pilnībā izšķīst ūdens vidē un neveido gabaliņus zeta potenciāla klātbūtnes dēļ27. Salīdzinot ar brīvo kurkumīnu, nano-kurkumīnam bija lielāka caurlaidība, ilgāka cirkulācija un labāka sistēmiskā biopieejamība plazmā un audos28–30.

Saskaņā ar Jiang et al.31 kurkumīns, kas ielādēts nanosfērās, stimulēja tā antioksidantu un imunoloģisko darbību. Šīs sekas var būt saistītas ar daļiņu samazināšanos nanometriskā mērogā, kas nodrošina aktīvo materiālu ilgtspējīgu izdalīšanos un palielina biopieejamību un molekulārās dispersijas līmeni31. Lai gan nav veikti pētījumi, lai salīdzinātu nanokurkumīna ietekmi ar tā brīvās formas ietekmi uz zivīm, nesen tas tika pārbaudīts ar tādiem putniem kā japāņu paipala (Coturnix japonica)32. Marchiori et al.32 atklāja, ka nanokapsulēts kurkumīns uzlaboja japāņu paipalu (Coturnix japonica) veiktspēju trīs reizes mazākā devā nekā brīvais kurkumīns, norādot uz nanomateriālu potenciālu uzlabot dzīvnieku produkciju.

Līdz šim nano-kurkumīns nav pārbaudīts zivju uzturā. Tāpēc šī pētījuma mērķis bija novērtēt uztura bagātinātāju ar kurkumīna brīvu vai nanoformu ietekmi uz Nīlas tilapijas augšanas veiktspēju, imunitātes stāvokli un karstuma stresa izturību.

Materiāli un metodes Eksperimentālās diētas.

Eksperimentālo diētu sastāvs un ķīmiskā analīze ir parādīta 1. tabulā. Tika sagatavotas septiņas izonitrogēnas (28 procenti olbaltumvielu) un izokalorijas (445 kcal/100 g DM) diētas. Sešas diētas tika papildinātas ar trīs līmeņiem nanokurkumīna (50 (CN50), 100 (CN100), 200 (CN200) mg kg-1 diēta) vai brīvā kurkumīna (50 (C50), 100 (C100), 200 (C200). ) mg kg-1 diēta), un kontroles diēta tika atstāta bez piedevas (CON). Sausās un smalki samaltās sastāvdaļas tika rūpīgi sajauktas ar rokām, pievienojot eļļas. Pēc tam visas sastāvdaļas mīca, pakāpeniski pievienojot siltu ūdeni. Mīklu granulēja, izmantojot piemērota diametra gaļasmašīnu. Diētas tika žāvētas saulē un uzglabātas -20 grādu temperatūrā plastmasas burkās.

Zivis un eksperimentālās telpas.

Nīlas tilapijas (Oreochromis niloticus) pirksti tika iegūti no komerciālas fermas netālu no Aleksandrijas un tika turēti stikla šķiedras tvertnē (1 m3) zivju audzēšanas laboratorijā Nacionālajā okeanogrāfijas un zivsaimniecības institūtā, Aleksandrijas filiālē, Ēģiptē. Simt sešdesmit astoņas zivis (13,54±0.32 g) tika atjaunotas 21 stikla akvārijā (70 L akvārijs-1) ar 8 zivju blīvumu katrā akvārijā. Katra apstrāde sastāvēja no 3 atkārtojumiem (A, B un C). Zivis tika aklimatizētas akvārijos 2 nedēļas un tika barotas ar kontroles diētu, lai pielāgotos eksperimentālajām diētām. Zivis tika barotas ar eksperimentālo diētu trīs reizes dienā līdz sāta sajūtai 65 dienas. Katram akvārijam tika nodrošināts dehlorēts krāna ūdens ar nepārtrauktu aerāciju. Katrā apstrādē patērētās barības daudzums tika aprēķināts katru nedēļu pēc pārtikas konteineru svara starpības pirms un pēc barošanas. Fotoperiods tika iestatīts attiecīgi 12 h: 12 h gaišs: tumšs. Eksperimenta laikā katru nedēļu tika uzraudzīti ūdens kvalitātes parametri, izmantojot Hanna Aquaculture Multiparameter Photometer, HI83303. Ūdens temperatūra, izšķīdušais skābeklis, amonjaka-N un pH tika reģistrēti šādi; 25±2,1 grāds, attiecīgi 6,4 mg L-1, 0,05 mg L-1 un 7,7. Pēc karstuma stresa (40 grādi) izšķīdušais skābeklis un amonjaks-N zivju tvertnē bija attiecīgi 2,1 mg L-1 un 0,62 mg L-1. Divas stundas pēc barošanas izkārnījumi tika noņemti ar sifonu.

Ētiskā deklarācija.

Eksperimenti tika veikti saskaņā ar vadlīnijām, kuras izklāstīja un apstiprināja Nacionālā okeanogrāfijas un zivsaimniecības institūta ūdens organismu un eksperimentālo dzīvnieku institucionālās aprūpes komiteja (NIOF-IACUC), Ēģipte.

Kurkumīna un nano-kurkumīna preparāts.

Kurkumīnu un nano-kurkumīnu sagatavoja NanoTech Egypt pētniecības nodaļa fotoelektronikas un nanotehnoloģiju jomā. Nano-kurkumīns tika pagatavots, izmantojot reducēšanas metodi, kā aprakstīja Dhivya et al.33. UV-Vis absorbcijas spektri tika iegūti ar Ocean Optics USB2000 plus VIS-NIR Fiber optics spektrofotometru. Lai izpētītu nanodaļiņu virsmas morfoloģiju un izmēru, tika izmantots augstas izšķirtspējas transmisijas elektronu mikroskops (TEM), JEOL JEM-2100. TEM attēlveidošana atklāja nanokurkumīna gandrīz sfērisku formu, gludu virsmu un vienmērīgu izmēru sadalījumu gandrīz 50±5,5 nm (1. att.). Nano-kurkumīna daļiņu daļiņu izmēru sadalījums un zeta potenciāls tika noteikts ar Zetasizer Malvern instrumentu (Malvern, UK), versija 7.13, sērijas numurs: MAL 1203718. Zeta potenciāls (mV) un Zeta novirze (mV) bija -25 .0 un 4.16 attiecīgi (2. att.).

Produktīvs sniegums.

Visas zivis katrā tvertnē tika savāktas un nosvērtas pirms barošanas izmēģinājuma sākuma un galapunktā. Izaugsme, barības izmantošana un citi biometriskie rādītāji tika aprēķināti saskaņā ar šādiem vienādojumiem:

Ķermeņa ķīmiskais sastāvs.

Pirms barošanas izmēģinājuma sākuma 10 zivju paraugi tika nejauši ņemti un sasaldēti -20 pakāpē visa ķermeņa bioķīmijas analīzei. Barošanas izmēģinājuma beigās tika ņemti seši zivju paraugi, lai veiktu visa ķermeņa bioķīmisko analīzi. Visi paraugi tika nekavējoties sasaldēti -20 grādu temperatūrā līdz analīzei. Lai novērtētu visu paraugu kopproteīna, lipīdu, mitruma un pelnu saturu, tika izmantotas AOAC34 metodes.

Asins paraugu ņemšana.

Pēc barošanas eksperimenta no katras apstrādes tika ņemti seši zivju paraugi asins analīzei. Krustnagliņu eļļa (0.1 ml L−1) ir izmantota zivju anestēzijai. Asins paraugi (1 ml) tika savākti no zivju astes vēnas plastmasas mikromēģenēs, kas satur antikoagulantu (dikālija etilēndiamīntetraetiķskābi, EDTA), lai saglabātu paraugus, lai tos varētu izmantot hematoloģiskajā analīzē. Viens ml asiņu no katra parauga tika savākts mikromēģenēs bez antikoagulanta un 10 minūtes centrifugēts ar ātrumu 2500 × g, lai atdalītu serumu, kas tika piešķirts bioķīmijas testam.

Hematoloģiskā pārbaude.

Eritrocīti, hematokrīts (HCT), hemoglobīns (HGB), vidējais asinsķermenīšu tilpums (MCV), vidējais korpuskulārais hemoglobīns (MCH), vidējā asinsķermenīšu hemoglobīna koncentrācija (MCHC), trombocīti (PLT), leikocīti un diferenciālais skaits (neitrofīli (NEUT), limfocīti) (LYMPH)), monocīti (MON), eozinofīli (EO), bazofīli (BAS) un nenobrieduši granulocīti (IG) tika skaitīti, izmantojot automatizētu hemocitometru XE 2100 (Advia 2120 & Sysmex, Siemens). Visi minētie rādītāji tika novērtēti pirms un pēc karstuma stresa.

Seruma bioķīmija.

Asins paraugu serumā tika analizēta seruma alanīna aminotransferāze (ALT), seruma aspartātaminotransferāze (AST), imūnglobulīns M (IgM), 3. un 4. komplementi (attiecīgi C3 un C4), kortizola un glikozes koncentrācija. Glikoze tika analizēta saskaņā ar heksokināzes metodi35, izmantojot Cobas pakotni (atsauces numurs, 04404483 190), izmantojot Cobas-c 311 analizatoru, sistēmas ID 0768316. Kortizols tika pārbaudīts, pamatojoties uz attiecīgās imūnkompleksa metodes veidošanos36, izmantojot elektroķīmiluminiscences imūntesta "ECLIA" pakotni (atsauces numurs, 11875116 122), izmantojot Cobas-e imūnanalīzes analizatoru. ALT analīze tika veikta, izmantojot Cobas C pakotni (atsauces numurs, 207649q57 322), Cobas-C 311 analizatoru, sistēmas ID 0 764 957. ALT tika noteikts saskaņā ar Bergmeyer et al.37 un ECCLS38. AlAT katalizēja reakciju starp L-alanīnu un 2-oksoglutarātu. Te-veidoto piruvātu reducē NADH reakcijā, ko katalizē laktātdehidrogenāze (LDH), veidojot L-laktātu un NAD. NADH oksidācijas ātrums ir tieši proporcionāls katalītiskajai ALT aktivitātei.

To nosaka, mērot absorbcijas samazināšanos. AST paraugā katalizēja aminogrupas pārnešanu starp L-aspartātu un 2-oksoglutarātu, veidojot oksaloacetātu un L-glutamātu. Pēc tam oksaloacetāts malāta dehidrogenāzes (MDH) klātbūtnē reaģēja ar NADH, veidojot NAD. Šis tests sekoja IFCC ieteikumiem, bet tika optimizēts saskaņā ar Bergmeyer et al.37 un ECCLS38, izmantojot Cobas c pakotni (atsauces numurs, 20764949322), izmantojot Cobas-C 311 analizatoru. Sistēma lD 076494I. IgM tika noteikts, pamatojoties uz imunoloģiskās aglutinācijas principu39 caur Cobas c 311, sistēmas ID 0767883, izmantojot Cobas c iepakojumu (atsauces numurs, 03507190). IgM antivielas un antigēni paraugā reaģēja viens ar otru un veidoja antigēna/antivielu kompleksu. Pēc aglutinācijas tas tika mērīts turbidimetriski pie apakšviļņa/galvenā viļņa garuma: 700/340. C3 un C4 tika noteikti, veidojot nogulsnes, pievienojot specifisku antiserumu, un pēc tam tos noteica turbidimetriski pie apakšviļņa/galvenā viļņa garuma: 700/34039. C3 tika mērīts, izmantojot Cobas c 311, sistēmas ID 0765600, izmantojot Cobas c pakotni (atsauces numurs, 03001938322). C4 tika analizēts, izmantojot Cobas c 311, sistēmas ID 0765619, izmantojot Cobas c pakotni (atsauces numurs, 03001962322).

Siltuma stress.

Pēc barošanas eksperimenta beigām piecas zivis no katra atkārtojuma tika savāktas no eksperimentālā stikla akvārija un pārvietotas uz 0.5-tonnu stikla šķiedras tvertni, kurā bija 7 apakšgrupas (7-). L perforēti plastmasas cilindriski konteineri). Katrs konteiners ir katras apstrādes kopija. Katras apstrādes atkārtojumi A, B un C ir bijuši pakļauti karstuma stresam attiecīgi pirmajā, otrajā un trešajā dienā. Tādējādi karstuma stresa izaicinājums tika atkārtots trīs reizes trīs dienas pēc kārtas. Ūdens temperatūra 3 stundu laikā tika pakāpeniski paaugstināta no 25 līdz 40 grādiem. Ūdens temperatūru kontrolēja mākslīgais termostats. Pēc 40 stundu ilgas iedarbības 40 grādu temperatūrā zivis no katras vienības tika anestēzētas, izmantojot krustnagliņu eļļu. Asins paraugi tika savākti, lai noteiktu ALAT, ASAT, IgM, C3 un C4, glikozes un kortizola līmeni, kā arī zivju hematoloģisko skaitu.

Statistiskā analīze.

Dati par augšanas veiktspēju un barības izmantošanu tika apstrādāti, izmantojot vienvirziena dispersijas analīzi (ANOVA). Divvirzienu ANOVA tika izmantota, lai novērtētu karstuma stresa un eksperimentālo diētu ietekmi uz zivīm. Lai sarindotu līdzekļus, tika izmantots Dankana post hoc tests. P mazāks vai vienāds ar 0.05 tika uzskatīts par statistiski nozīmīgu. Visa statistika tika apstrādāta, izmantojot SPSS pakotni (versija 23.0).

Deklarācija.

Visas metodes ir norādītas ARRIVE vadlīnijās 2.0.

Rezultāti

Izaugsmes veiktspēja un barības izmantošana.

Ar eksperimentālo barību baroto zivju augšanas veiktspējas un barības izmantošanas rezultāti ir parādīti 2. tabulā. Vislielākais galīgais svars (FW) un svara pieaugums (WG) tika iegūts ar zivīm barotām CN100, kam sekoja CN200 (P Mazāks vai vienāds ar 0.05). Zivīm, kas barotas ar CN50, bija mērens FW un WG, un tās bija līdzīgas tām, kas barotas ar C100 (P ir lielāka vai vienāda ar 0.0 5). Zemākie WG rezultāti tika reģistrēti ar fsh-fed CON, C50 vai C200 (P Mazāks vai vienāds ar 0,05). Zivīm, kuras baroja ar CN100 un CN200, bija visaugstākais īpatnējais augšanas ātrums (SGR), kam sekoja CN50 un C100 (P mazāks vai vienāds ar 0,05). Tomēr SGR ar fsh barotajā CN200 būtiski neatšķīrās no CN50 vai C100 (P lielāks vai vienāds ar 0,05). CON, C50 un C200 zivju grupas radīja zemāko SGR (P Mazāks vai vienāds ar 0,05). Augstākais vidējā dienas pieauguma (ADG) rezultāts tika reģistrēts CN100 grupā, kam sekoja CN200 un pēc tam CN50 un C100 grupas (P Mazāks vai vienāds ar 0, 05). Grupas CON, C50 un C200 uzrādīja zemākās ADG vērtības (P Mazāka vai vienāda ar 0,05). Vislielākā barības uzņemšana (FI) tika reģistrēta grupās CN50, CN100, CN200 un C100, kam sekoja CON, C50 un C200 grupas (P mazāks vai vienāds ar 0,05). Zemākā FCR tika konstatēta CN100 un CN200, kam sekoja CN50 un C100, savukārt augstākās FCR vērtības tika novērotas CON, C50 un C200 (P Mazāks vai vienāds ar 0,05). CN100 un CN200 grupas sniedza visaugstākās olbaltumvielu efektivitātes koeficienta (PER) vērtības, kam sekoja CN50 un C100, savukārt zemākās vērtības tika iegūtas CON, C50 un C200 (P mazāks vai vienāds ar 0,05).

Ķermeņa ķīmiskais sastāvs.

Nīlas tilapijas, ko baro ar eksperimentālo diētu, tuvākā ķīmiskā sastāva rezultāti ir parādīti 3. tabulā. Dažādās grupās nebija būtisku sausnas atšķirību (P lielāks par vai vienāds ar 0.05 ). Augstākās kopproteīna (CP) vērtības tika iegūtas CN50, CN100, CN200 un C100, kam sekoja CON, C50 un C200 (P mazāks vai vienāds līdz 0,05); tomēr C50 būtiski neatšķīrās no CN50, CN100 un C100 (P lielāks vai vienāds ar 0,05). Visām procedūrām neapstrādātu lipīdu attiecība bija augstāka nekā CON (P mazāka vai vienāda ar 0, 05). Visaugstākie pelnu rezultāti tika reģistrēti CON un C200, kam sekoja C50, un zemākie rezultāti tika novēroti CN50, CN100, CN200 un C100 (P Mazāks vai vienāds ar 0,05).

Hematoloģiskā analīze.

4. tabulā parādīta zivju hematoloģiskā analīze pēc barošanas eksperimenta 25 grādu temperatūrā un pēc karstuma spriedzes pie 40 grādiem. Rezultāti atklāja, ka eksperimentālās diētas un karstuma stress būtiski ietekmēja dažus hematoloģiskos parametrus (P mazāks vai vienāds ar 0.05). Eksperimentālās diētas neietekmēja hematoloģiskos rādītājus (P lielāks vai vienāds ar {{10}},05), izņemot C200, kas nodrošināja augstāku leikocītu un mazāku neitrofilu skaitu salīdzinājumā ar citām eksperimentālajām diētām (P mazāks par vai vienāds ar 0,05). Tomēr pēc karstuma stresa tika konstatēts trombocītu, MCV, MCH, leikocītu un neitrofilu skaita pieaugums, bet limfocītu skaits tika samazināts (P mazāks vai vienāds ar 0,05) un nebija nekādas ietekmes uz citu hematoloģisko stāvokli. parametri (P Lielāks vai vienāds ar 0,05).

Bioķīmiskā asins analīze.

Bioķīmiskās asins analīzes rezultāti pirms un pēc Nīlas tilapijas, ko baro ar eksperimentālajām diētām, karstuma stresa, ir parādīti 5. tabulā. Gan uzturam, gan karstuma stresam ir liela ietekme uz fsh bioķīmiskajiem asins parametriem (P mazāks vai vienāds uz 0.05). ALT uzrādīja visaugstāko aktivitāti C200, kam sekoja CON un C100, un pēc tam C50 un CN200, savukārt zemākās vērtības tika iegūtas CN50 un CN100 ārstēšanā (P mazāks vai vienāds ar 0,05). . Vislielākā AST aktivitāte tika dota C200, kam sekoja C100 un CON ārstēšana, kam sekoja C50, savukārt zemākā aktivitāte tika konstatēta CN50, CN100 un CN200 ārstēšanā (P mazāka vai vienāda ar 0,05). Tomēr AST vērtība CN200 būtiski neatšķīrās no C50 (P lielāka vai vienāda ar 0,05).

Augstākais IgM līmenis tika iegūts C200, C100, CN100 un CN20 0, kam seko CN50, savukārt C50 un CON sniedza viszemākās vērtības (P Mazāks vai vienāds ar 0,05). C200 uzrādīja augstāko C3 līmeni, kam sekoja CN50 (P mazāks vai vienāds ar 0,05), savukārt C100, CN100 un CN200 būtiski neatšķīrās no C200 vai CN50 (P lielāks vai vienāds ar 0,05). C50 un CON sniedza zemākās vērtības C3 (P Mazāks vai vienāds ar 0,05). Visaugstākās C4 vērtības tika konstatētas C200 un CN200, kam sekoja CN50 un pēc tam CN100 un C100, savukārt C50 un CON sniedza viszemākos rezultātus (P Mazāks vai vienāds ar 0,05). C200 sniedza augstāko kortizola vērtību, kam sekoja CON, kam sekoja C100 un pēc tam CN200 un C50 (P mazāks vai vienāds ar 0,05). Zemākie kortizola rezultāti tika reģistrēti attiecībā uz CN50 un CN100 (P mazāks vai vienāds ar 0,05). Glikoze, kas iegūta C200 un CON, bija augstāka nekā citās procedūrās (P mazāka vai vienāda ar 0,05). Pēc karstuma stresa tika novērots ALAT, ASAT, IgM, C3, C4, kortizola un glikozes līmeņa paaugstināšanās (P mazāks vai vienāds ar 0,05).

Diskusija

Pašreizējā pētījumā Nīlas tilapijas barošana ar kurkumīnu saturošām diētām nodrošināja ievērojami labākus augšanas rezultātus salīdzinājumā ar kontroles diētu. Turklāt šis pētījums ievērojami atklāj nano-kurkumīna pārākumu pār tā brīvo formu, uzlabojot Nīlas tilapijas augšanas veiktspēju. Pašreizējā pētījumā Nīlas tilapijas vislabākie augšanas rādītāji (WG, SGR un ADG) un barības izmantošana (FCR un PER) tika sasniegti ar 100 mg kg-1, kam sekoja 200 mg kg-1 nanokurkumīna diēta. . Tas saskan ar Mahmudu et al.23, kuri atklāja, ka Nīlas tilapijas (Oreochromis niloticus) barošana ar 50 vai 100 mg kg-1 kurkumīna diētu uzlaboja augšanu un barības izmantošanu. Viņi saistīja šo augšanas veiktspējas un barības izmantošanas uzlabošanos ar gremošanas enzīmu (amilāzes, proteāzes, tripsīna un lipāzes) aktivitāti22,40. Turklāt kurkumīns var uzlabot citus enzīmus (Na plus /K plus -ATPāzi, zarnu sārmaino fosfatāzi, gamma-glutamiltranspeptidāzi un kreatīnkināzi), kas ir atbildīgi par barības vielu noārdīšanos un asimilāciju22. Turklāt kurkumīns var darboties kā prebiotika, veicinot zarnu forumu un uzlabojot gremošanu un uzsūkšanos zarnās, tādējādi uzlabojot vispārējo veselību un fsh40 augšanu. Kurkumīna uztura bagātinātāju pozitīvā ietekme ir atklāta dažādām zivju sugām, piemēram, amūriem (Ctenopharyngodon ideas)41, karūsām (Carassius auratus)22, lielajam dzeltenajam ķeburam (Pseudosciaene crocea)42, varavīksnes forelei (Oncorhynchus mykiss)17. jūras asaris (Lates calcarifer)43.

Kā minēts iepriekš, šis pētījums ir pārāks par kurkumīna nanodaļiņām salīdzinājumā ar brīvo kurkumīnu, uzlabojot Nīlas tilapijas augšanas ātrumu. Citiem vārdiem sakot, mazāka nano-kurkumīna deva var uzlabot Nīlas tilapijas augšanas spēju un dot tādu pašu efektu kā lielāka brīvā kurkumīna deva. Piemēram, 50 mg kg-1 nanokurkumīna diēta deva tādu pašu efektu kā 100 mg kg-1 brīvā kurkumīna diēta. Pamatojoties uz to, nano-kurkumīna bioloģiskais pusperiods ir 60-kārtīgs, salīdzinot ar brīvo kurkumīnu žurku modeļos44. Turklāt nano-kurkumīnam ir augstāka sistēmiskā biopieejamība plazmā un audos, salīdzinot ar brīvo kurkumīnu30. Tas var būt saistīts ar brīvā kurkumīna zemo šķīdību ūdenī; tāpēc tas veido agregātus un ir uzņēmīgs pret opsonizāciju, savukārt nano-kurkumīns pilnībā izšķīst ūdenī bez agregācijām, pateicoties tā zeta potenciālam27.

Brīvā kurkumīna un nano-kurkumīna pievienošana augstākajā līmenī (200 mg kg-1 diēta) pašreizējā pētījumā samazināja augšanas veiktspēju un barības izmantošanu salīdzinājumā ar CON. Patiesībā kurkumīns ir polifenols. Ir ziņots, ka nelielas polifenolu devas var bioloģiski uzkrāties ķermeņa audos, kur tie netiek pilnībā absorbēti zarnās45. Polifenoli lielā daudzumā var izraisīt augšanas regresiju46. Šis efekts bija mazāks nano-kurkumīna apstrādē, norādot, ka nano-kurkumīns var būt drošāks nekā tā brīvā forma. Atbalstam Lī et al.47 atklāja nano-kurkumīna izmantošanas bioloģisko drošību.

Šajā pētījumā kurkumīns un nano-kurkumīns palielināja kopproteīna un lipīdu saturu zivju ķermenī. Tāpat uztura bagātinātājs ar kurkumīnu 50–200 mg kg-1 uzturā ievērojami uzlaboja neapstrādātu lipīdu un olbaltumvielu nogulsnēšanos Nīlas tilapijas muskuļos23. Tas varētu būt saistīts ar zarnu mikrobiotas regulēšanu, kas uzlaboja efektīvu barības vielu izmantošanu23. Vēl viens izskaidrojums būtu kurkumīna labvēlīgā ietekme uz zivju gremošanas enzīmu, tostarp tripsīna, lipāzes un amilāzes, aktivitāti22. Turklāt negatīvi lādētas daļiņas, piemēram, nano-kurkumīns, palēnina seruma proteīnu adsorbcijas ātrumu, kā rezultātā cirkulācijas pusperiods ir garāks nekā pozitīvi lādētām daļiņām48. Tas varētu izskaidrot, kāpēc ar zivīm barotām diētām, kas satur nanokurkumīnu, bija augstāks kopproteīna saturs nekā ar zivīm barotām brīvā kurkumīna diētām.

Jebkurš aknu enzīmu aktivitātes pieaugums, piemēram, ALAT un ASAT, ir aknu bojājuma bioloģiskais marķieris49,50. Šajā pētījumā ALAT un AST līmenis tika samazināts nano-kurkumīna grupās pirms vai pēc karstuma stresa un zināmā mērā brīvā kurkumīna grupās, parādot nano-kurkumīna priekšrocības (tas tika pamatots iepriekš šajā diskusijā ). Līdzīgi kurkumīns var novērst hepatotoksicitāti žurkām, ko izraisa ūdeņraža peroksīds, un samazināt ALAT un AST enzīmu līmeni51. Turklāt eksperimentālie rezultāti ar pelēm ar oglekļa tetrahlorīda (CCl4) izraisītu fibrozi parādīja, ka nanokurkumīns ievērojami samazināja ALAT un ASAT līmeni 52. Tādējādi kurkumīna spēja samazināt dažus asins marķierus (piemēram, ALAT un ASAT) norāda uz tā spēju kā pretstatu. -iekaisuma līdzeklis aknu bojājuma laikā53.

Neraugoties uz kurkumīna aizsargājošo iedarbību pret aknu bojājumiem šajā pētījumā mērenā koncentrācijā (100 mg kg-1 diēta), nelabvēlīga ietekme parādījās augstākā koncentrācijā (200 mg kg-1 diēta). Pēc tam pašam modelim kurkumīnam bija arī no koncentrācijas atkarīga iedarbība milzu karpu (Cyprinus carpio), kas cieta no CCl izraisītiem aknu bojājumiem54. Līdzīgi tika konstatēts, ka kurkumīnam ir divējāda ietekme uz alkohola izraisītiem aknu bojājumiem žurku tēviņiem atkarībā no koncentrācijas, jo tā aizsargājošā iedarbība tika iegūta tikai zemā koncentrācijā, bet aknu bojājuma paātrinājums tika novērots pie lielākas koncentrācijas 55. Vēl viens pētījums žurkas norādīja, ka augsta koncentrācija ar ilgstošu kurkumīna uzņemšanu var samazināt ķermeņa svaru, paātrināt oksidatīvo stresu un iekaisumu un stimulēt aknu bojājumus, vienlaikus palielinot AST un -GGT līmeni56.

Kurkumīna divējāda iedarbība var būt saistīta ar tā spēju stimulēt hēma oksigenāzi -1 (HO-1) netoksiskā un toksiskā koncentrācijā, un HO-1 indukcija ir saistīta ar reaktīvās skābekļa sugas (ROS), kas liecina par cēloņsakarību57. Līdzīgi Cao et al.58 atklāja, ka zemākās koncentrācijās kurkumīnam ir labvēlīga ietekme, izraisot antioksidantu aktivitātes; tomēr augstākas koncentrācijas palielina šūnu ROS līmeni, izraisot oksidatīvus DNS bojājumus cilvēka hepatomas G2 šūnās.

Siltuma stress paaugstina stresa rādītājus, piemēram, kortizola un glikozes līmeni. Pašreizējā pētījumā kurkumīna (izņemot lielo 200 mg kg-1 diētas devu) vai nano-kurkumīna iekļaušana tilapijas diētās samazināja gan glikozi, gan kortizolu pirms vai pēc karstuma stresa. Labākais kortizola līmenis tika noteikts CN50 un CN100. Tas, iespējams, ir pamatots ar kurkumīna kā polifenola raksturu. Ir pierādīts, ka polifenoli uzlabo stresa rādītājus kortizola un glikozes līmeni59,60). Šos efektus var attiecināt arī uz kurkumīna antioksidācijas īpašībām, kas, kā konstatēts, iznīcina lipīdu radikāļus šūnu membrānā un kļūst par fenoksila radikāli14,61. Turklāt kurkumīns pazemina glikozes līmeni aknās, palielinot glikozes uzņemšanu, regulējot GLUT2, GLUT3 un GLUT4 gēnu ekspresijas62. Atbalstam Wei et al.63 atklāja, ka uztura kurkumīns cūkām ievērojami samazināja stresa izraisīto kortizolu par vienu trešdaļu.

Tomēr šajā pētījumā augstāka kurkumīna koncentrācija (200 mg kg-1 diēta) izraisīja augstāku kortizola līmeni salīdzinājumā ar citām ārstēšanas metodēm, tostarp kontroles grupu. Paralēli C200 ražoja augstāku glikozes līmeni, kas līdzīgs kontroles grupas iegūtajam līmenim. Tāda pati ietekme tika novērota dējējvistām, kur lielākas kurkumīna devas nesamazināja kortizolu, salīdzinot ar zemākām koncentrācijām, kas samazināja kortizola līmeni pirms vai pēc augstas temperatūras iedarbības 64. Autori šo efektu saistīja ar kurkumīna divējādas iedarbības potenciālu, jo tas var darboties kā antioksidants un/vai oksidētājs atkarībā no tā devas65. Augstā peroksīdu koncentrācija palielina ROS izdalīšanos, kas bojā šūnas un audus65.

Šajā pētījumā eksperimentālās diētas neietekmēja hematoloģiskos rādītājus, izņemot C200, kas deva augstāku leikocītu un zemāku neitrofilu līmeni salīdzinājumā ar citām eksperimentālajām diētām. Paaugstināts leikocītu skaits pie augsta kurkumīna līmeņa (200 mg kg-1 diēta) var uzsvērt zivju stresa stāvokli šajā koncentrācijā. Leikocitoze ir tieši proporcionāla stresa smagumam, kā arī stresa radītajam kaitējumam, kas pēc tam iedarbina imūnās aizsardzības sistēmu 66,67.

Temperatūra ietekmē fsh68 hematoloģiskos parametrus. Šajā sakarā pēc karstuma stresa palielinājās trombocītu, MCV, MCH, leikocītu un neitrofilu skaits, kamēr limfocītu skaits samazinājās, un pašreizējā pētījumā nebija nekādas ietekmes uz citiem asins parametriem. Apstiprinot to, Grzelak et al.69 ziņoja par nozīmīgu limfopēniju un neitrofīliju akūtā stresa stāvoklī esošajām zebrazivīm (Danio rerio), salīdzinot ar nestresotajām vai kontroles zivīm. Turklāt termiskais stress izraisa hipoksiju vai anoksiju 70, 71, un par šo efektu tika ziņots šajā pētījumā. Savukārt tika konstatēts, ka hipoksija palielina leikocītu, trombocītu un neitrofilu skaitu un samazina limfocītu skaitu sarkanajā tilapijā 72. Tas var būt saistīts ar paaugstinātu kortizola 72 līmeni. Neitrofilija un limfopēnija bija acīmredzama pēc ārstēšanas ar kortizolu. karpas (C. carpio L.)73. Karpas (Carassius carassius) pēc stresa iedarbības asinīs radīja augstu neitrofilu un limfocītu attiecību, kas ir cieši saistīta ar paaugstinātu glikokortikoīdu līmeni 74.

Imūnglobulīns M un komplementi (C3 un C4) ir galvenās zivju iedzimtās imūnsistēmas sastāvdaļas, un tās ir vienas no pirmajām imūnsistēmas aizsardzības līnijām, un tām ir izšķiroša nozīme zivju veselības aizsardzībā75–78. IgM un komplementiem ir svarīga loma dzīvnieka ķermeņa aizsardzībā no infekcijas stresa laikā, kā arī apoptotisko un ievainoto šūnu iekļūšanas veicināšanā79–82. Faktiski pirms un pēc karstuma stresa šajā pētījumā IgM, C3 un C4 līmenis palielinājās līdz ar kurkumīna iekļaušanu uzturā. Turklāt nano kurkumīns uzrādīja labākus uzlabojumus šajos rādītājos nekā brīvais kurkumīns. Šeit sniegtie rezultāti par IgM, C3 un C4 izceļ divus faktus: zemā kurkumīna deva ir labāka, un nanoformulācija ir efektīvāka (kas tika pamatots šajā diskusijā iepriekš). Atbalstam kurkumīns izraisīja Nīlas tilapijas iedzimto imūnreakciju 50 mg kg-1 diētas devā, bet augšana tika kavēta augstākā līmenī23. Šajā pētījumā konstatēts, ka IgM, C3 un C4 līmenis palielinājās līdz ar paaugstinātu temperatūru, atklājot pretiekaisuma vielu ražošanas stimulāciju, lai samazinātu audu bojājumus. To apstiprina seruma aknu enzīmu (ALT un ASAT) rezultāti šajā pētījumā. Ir zināms, ka karstuma stress zivīm izraisa audu bojājumus un oksidatīvo stresu; tādējādi tas noved pie apoptozes un šūnu nāves83–85. Īstermiņa akūts karstuma stress izraisa C3 un C486 augšupregulāciju. Turklāt komplementa sistēmas deficīts ir palielinājis asinsvadu bojājumus, asinsvadu caurlaidību un angioedēmu 87.

Nīlas tilapijā tika novērots pakāpenisks IgM līmeņa pieaugums plazmā, palielinoties temperatūrai (18, 23, 28, 33 grādi), izņemot augstāko temperatūru10. Līdzīgi jūras asaru (Dicentrarchus labrax) audzēšana augstā temperatūrā (23 grādi) paaugstināja to IgM līmeni, salīdzinot ar zivju audzēšanu 17 88 grādu temperatūrā. Gluži pretēji, citi pētījumi atklāja, ka HS samazināja IgM, C3 un C4 līmeni fsh89– 91. Šo neatbilstību var attaisnot karstuma stresa ilgums, kad IgM, C3 un C4 līmenis paaugstinās akūtā stresa gadījumā, bet samazinās hroniska stresa gadījumā9, 10. Strupā brekša (Megalobrama amblycephala Yih) novēroja alternatīvo komplementa aktivitāšu un IgM līmeņa paaugstināšanos pēc 6 h karstuma stresa iedarbības, kas samazinājās pēc 12 h9.

Visbeidzot, nano-kurkumīns ir pārāks par brīvo kurkumīnu, uzlabojot Nīlas tilapijas augšanas veiktspēju, stresa rādītājus, nespecifisko imunitāti un karstuma stresa izturību. Uztura bagātināšana ar nano-kurkumīnu 50 vai 100 mg kg-1 diētas līmenī bija efektīva, lai uzlabotu veiktspēju un mazinātu karstuma stresa negatīvās sekas, savukārt 100 vai 200 mg kg-1 diētas deva uzlaboja Nīlas tilapijas augšanas spēju. . Tādējādi 100 mg kg-1 diēta bija efektīva gan augšanas veiktspējai, gan karstumizturības spējai.

Datu pieejamība

Visi šī pētījuma laikā iegūtie vai analizētie dati ir iekļauti šajā publicētajā rakstā.

Atsauces

1. Wang, M. & Lu, M. Tilapia polyculture: A Global Review. Akvakults. Res. 47, 2363–2374 (2016).

2. FAO (Apvienoto Nāciju Organizācijas Pārtikas un lauksaimniecības organizācija). 2020. Globālā akvakultūras produkcija 1950.–2020.

3. Bao, JW et al. Asins bioķīmijas, taukskābju sastāva un mikroRNS ekspresijas reakcija uz karstuma stresu ģenētiski uzlabotā saimniecībā audzētā tilapijā (Oreochromis niloticus). J. Term. Biol. 73, 91–97 (2018).

4. El-Sayed, AFM Tilapia Culture 2nd end, 348 (Elsevier/Academic Press, 2020).

5. Dawood, MAO, Eweedah, NM & Elbialy, ZIA Diētiskais nātrija butirāts uzlaboja Nīlas tilapijas (Oreochromis niloticus), kas pakļautas karstuma stresam, asins stresa biomarķierus, karstuma šoka proteīnus un imūnreakciju. J. Term. Biol. 88, 102500 (2020).

6. Bagath, M. et al. Karstuma stresa ietekme uz piena liellopu imūnsistēmu. Rev. Res. Veterinārs. Sci. 126, 94–102 (2019).

7. Chu, GM & Song, YM Nobarojamo cūku augšanas rādītāji, asins īpašības un imūnās atbildes dažādos gadalaikos. Aziāts J. Anim. Veterinārs. Adv. 8(5), 691–702 (2013).

8. Das, R. et al. Karstuma stresa ietekme uz piena dzīvnieku veselību un veiktspēju: pārskats. Veterinārs. Pasaule. 9, 260–268 (2016).

9. Džans, K. N. un citi. Fruktooligosaharīda ietekme uz imūnreakciju, antioksidantu spēju, kā arī HSP70 un HSP90 izpausmēm stulbā brekšu (Megalobrama amblycephala Yih) augsta karstuma stresa apstākļos. Aquaculture 433, 458–466 (2014).

10. Dominguez, M., Takemura, A., Tsuchiya, M., & Nakamura, S. Dažādu vides faktoru ietekme uz cirkulējošo imūnglobulīnu līmeni Nīlas tilapijā, Oreochromis niloticus. Akvakultūra 241, 491e500 (2004).

11. Galina, J., Yin, G., Ardo, L. & Jeney, Z. Te use of immunostimulating herbs in fish: An overview of research. Fish Physiol, Biochem. 35, 669–676 (2009).

12. Vallejos-Vidal, E., Reyes-López, F., Teles, M. & MacKenzie, S. Te reakcija fsh to immunostimulant diets. Zivju vēžveidīgie Immunol. 56, 34–69 (2016).

13. Lee, WH et al. Kurkumīns un tā atvasinājumi: to pielietojums neirofarmakoloģijā un neirozinātnē 21. gadsimtā. Curr. Neirofarmakols. 11, 338–378 (2013). 14. Ak, T. Kurkumīna antioksidanta un radikāļu attīrīšanas īpašības. Chem. Biol. Mijiedarboties. 174, 27–37 (2008).

15. Aggarwal, BB & Harikumar, KB Kurkumīna, pretiekaisuma līdzekļa, iespējamā terapeitiskā iedarbība pret neirodeģeneratīvām, sirds un asinsvadu, plaušu, vielmaiņas, autoimūnām un neoplastiskām slimībām. Int. J. Biochem. Cell Biol. 41, 40–59 (2009).

16. Yuan, J., Liu, R., Ma, Y., Zhang, Z. & Xie, Z. Kurkumīns mazina elpceļu iekaisumu un elpceļu pārveidošanu, inhibējot NF-kB signālu pārraidi un COX-2 cigarešu dūmos. inducētās HOPS pelēm. Iekaisums 41, 1804–1814 (2018).

17. Yonar, EM, Yonar, SM, İspir, Ü., Ural, M. & Ş.,. Kurkumīna ietekme uz varavīksnes foreļu (Oncorhynchus mykiss) hematoloģiskām vērtībām, imunitāti, antioksidantu stāvokli un rezistenci pret Aeromonas salmonicida subsp. Ahromogēni. Zivju vēžveidīgie Immunol. 89, 83–90 (2019).

18. Leya, T. et al. Ar kurkumīnu papildinātas diētas ietekme uz Cirrhinus mrigala augšanu un nespecifiskajiem imūnsistēmas parametriem pret Edwardsiella tarda infekciju. Int. J. Curr. Microbiol. 6, 1230–1243 (2017).

19. Negi, PS, Jayaprakasha, GK, Rao, LJM & Sakariah, KK Kurkuma eļļas antibakteriālā aktivitāte: kurkumīna ražošanas blakusprodukts. J. Agric. Food Chem. 47, 4297–4300 (1999).

20. Mandal, MNA et al. Kurkumīns aizsargā tīklenes šūnas no gaismas un oksidētāju stresa izraisītas šūnu nāves. Bezmaksas Rad. Biol. Med. 46, 672–679 (2009).

21. Prasad, S., Gupta, SC, Tyagi, AK & Aggarwal, BB Kurkumīns, zelta garšvielu sastāvdaļa: no gultas līdz solam un aizmugurē. Biotehnoloģija. Adv. 32, 1053–1064 (2014).

22. Jiang, J. et al. Kurkumīna uztura bagātinātāju ietekme uz karūsas Carassius auratus augšanas veiktspēju, zarnu gremošanas enzīmu darbību un antioksidantu spēju. Aquaculture 463, 174–180 (2016).

23. Mahmoud, HK, Al-Sagheer, AA, Reda, FM, Mahgoub, SA & Ayyat, MS Uztura kurkumīna piedevas ietekme uz augšanu, imunitāti, antioksidantu stāvokli un rezistenci pret Aeromonas hydrophila in Oreochromis niloticus. Akvakultūra 475, 16–23 (2017).

24. Umamaheswari, M. & Krishnamurthy, R. Kurkumīna (Curcuma longa) imūnmodulējošā iedarbība uz saldūdens ēdamajām zivīm Catla catla (Hamilton-Buchanan). Int. J. Adv. Sci. Res. Manag. 3, 115–118 (2018).

25. García-Pérez, OD et al. Konjugētās linolskābes un kurkumīna ietekme uz augšanas veiktspēju un oksidatīvā stresa enzīmiem mazuļu Klusā okeāna balto garneļu (Litopenaeus vannamei) barībā ar aflatoksīniem. Akvakults. Res. 51, 1051–1060 (2020).

26. Li, L., Zhang, Z. & Huang, Y. Integratīvā transkripta analīze un signalizācijas ceļu atklāšana, kas saistīti ar kurkumīna aizsargājošo iedarbību pret oksidatīvo stresu tilapijas hepatocītos. Aquat. Toksikols. 224, 105516 (2020).

27. Muller, RH & Keck, CM Izaicinājumi un risinājumi biotehnoloģiju zāļu piegādei — zāļu nanokristālu tehnoloģiju un lipīdu nanodaļiņu pārskats. J. Biotechnol. 113, 151–170 (2004).

28. Mythri, RB, Jagatha, B., Pradhan, N., Andersen, J. & Bharath, MS Mitohondriju kompleksa I inhibīcija Parkinsona slimībā: kā kurkumīns var aizsargāt mitohondrijus? Antiokss. redokssignāls. 9, 399–408 (2007).

29. Sahni, JK, Baboota, S. & Ali, J. Promising role of nanofarmaceuticals in drug delivery. Pharm. reizes. 43, 16–18 (2011).

30. Zou, P., Helson, L., Maitra, A., Stern, ST & McNeil, SE Polimēru kurkumīna nanodaļiņu farmakokinētika un metabolisms žultsceļu kanulētās žurkās. Mol. Farmācija. 10, 1977–1987 (2013).

31. Jiang, Y., Chekuri, S., Fang, RH & Zhang, L. Inženiertehniskās bioloģiskās mijiedarbības nanomērogā. Curr. Atzinums. Biotehnoloģija. 55, 1–8 (2019).

32. Marchiori, MS et al. Kurkumīns paipalu uzturā aukstuma stresa apstākļos uzlabo veiktspēju un olu kvalitāti. Anim. Feed Sci. Tehn. 254, 114–192 (2019).

33. Dhivya, R., Rajendran, J. & Rajasekaran, M. PH reaģējošs kurkumīns/ZnO nanokompozīts zāļu piegādei. Adv. Mater. Lett. 6, 505–512 (2015).

34. AOAC (Oficiālo analītisko ķīmiķu asociācija). Oficiālās analīzes metodes. AOAC, Ārlingtona, Virdžīnija (1990).

35. Maisiņi, DB Ogļhidrāti. In: Tietz NW (ed) Fundamentals of Clinical Chemistry. 4. izdevums. WB Saunders, Filadelfija, 351.–374. lpp. (1996).

36. Rosalki, S. Virsnieru garozas funkcijas bioķīmiskā pārbaude. Int. Dž.Klins. Prakse. 52, 189–191 (1998).

37. Bergmeyer, HU, Horder, N. & Rej, R. Apstiprināts ieteikums par IFCC metodēm fermentu katalītiskās koncentrācijas mērīšanai. 2. daļa. IFCC metode aspartātaminotransferāzes noteikšanai. Dž.Klins. Chem. Clin. Biochem. 24, 497–510 (1986).

38. ECCLS. L: aspartātaminotransferāzes (EC 2.6.1.1, ASAT) katalītiskās aktivitātes koncentrācijas noteikšana serumā. Klin. Chem. Miti. 20, 198–204 (1989).

39. Tiez, NW, ed. Laboratorijas pārbaužu klīniskais ceļvedis, 3. izdevums. Filadelfija: WB Saunders Company 354–357 (1995).

40. Midhun, SJ et al. Gremošanas enzīmu, GH, IGF-1 un IGF-2 gēnu modulācija teleostā, tilapijā (Oreochromis mossambicus) ar uztura kurkumīnu. Akvakults. Int. 24, 1277–1286 (2016).

For more information:1950477648nn@gmail.com