Oligochaeta sliekas Lumbricus Terrestris (Linnaeus, 1758) koelomocīti kā aizsardzības evolūcijas atslēga: morfoloģisks pētījums

Abstrakts

Metazoaniem ir vairāki iekšējās aizsardzības mehānismi viņu izdzīvošanai. Iekšējās aizsardzības sistēma attīstījās līdzās organismiem. Annelidae ir cirkulējoši celomocīti, kas veic funkcijas, kas salīdzināmas ar mugurkaulnieku fagocītiskajām imūnšūnām. Vairāki pētījumi ir parādījuši, ka šīs šūnas ir iesaistītas fagocitozes, opsonizācijas un patogēnu atpazīšanas procesos. Tāpat kā mugurkaulnieku makrofāgi, šīs cirkulējošās šūnas, kas caurstrāvo orgānus no celomiskā dobuma, uztver vai iekapsulē patogēnus, reaktīvās skābekļa sugas (ROS) un slāpekļa oksīdu (NO). Turklāt tie ražo virkni bioaktīvu proteīnu, kas iesaistīti imūnreakcijā, un veic detoksikācijas funkcijas, izmantojot savu lizosomu sistēmu.

Coelomocīti var piedalīties arī litiskajās reakcijās pret mērķa šūnām un pretmikrobu peptīdu izdalīšanos. Mūsu pētījums imūnhistoķīmiski identificē Lumbricus terrestris celomocītus, kas izkaisīti epidermā un zemāk esošajā savienojošajā slānī, gan gareniskajā, gan gludajā muskulatūras slānī, pirmo reizi imūnreaktīvi pret TLR2, CD14 un -Tubulīnu. TLR2 un CD14 nav pilnībā kolokalizēti viens ar otru, kas liecina, ka šie coelolocīti var piederēt divām atšķirīgām ģimenēm. Šo imūnmolekulu ekspresija uz Annelidae coelomocītiem apstiprina to izšķirošo lomu šo Oligochaeta protostomu iekšējā aizsardzības sistēmā, kas liecina par šo receptoru filoģenētisko saglabāšanos. Šie dati varētu sniegt papildu ieskatu izpratnē par Annelida iekšējo aizsardzības sistēmu un mugurkaulnieku imūnsistēmas kompleksajiem mehānismiem.

Coelomocīti ir cieši saistīti ar imunitāti. Coelomocīti ir šūnas, kas saistītas ar imūnsistēmu. Tie var izdalīt dažādus imūno faktorus, piemēram, citokīnus, interleikīnus, antigēnus un antivielas, lai regulētu un uzlabotu organisma imūnās spējas.

Celomocīti veic dažādas imūnās funkcijas, tostarp regulē šūnu imūnās atbildes reakcijas kā antigēnu prezentējošas šūnas, tieši nogalina patogēnus un patoloģiskas šūnas un piedalās iekaisuma un imūnreakciju regulēšanā. Turklāt daži pētījumi ir parādījuši, ka celomocīti var arī uzlabot imunitāti pret potenciālajiem patogēniem, uzkrājot imūnās atmiņas šūnas, tādējādi uzlabojot organisma imunitāti.

Tāpēc normālas celolocītu funkcijas un daudzuma uzturēšana ir ļoti svarīga organisma imunitātei. Tajā pašā laikā, regulējot un uzlabojot celolocītu imūnfunkciju, var uzlabot arī organisma imunitāti, lai labāk novērstu un ārstētu dažādas slimības. No tā mēs varam redzēt imunitātes nozīmi. Cistanche var uzlabot imunitāti. Cistanche ir bagāta ar dažādām antioksidantu vielām, piemēram, C vitamīnu, C vitamīnu, karotinoīdiem utt. Šīs sastāvdaļas var attīrīt brīvos radikāļus, samazināt oksidatīvo stresu un uzlabot imunitāti. sistēmas pretestība.

Click cistanche tubulosa priekšrocības

Atslēgvārdi

Annelids, Coelomocytes, sliekas, evolūcija, imunitāte.

Ievads

Iekšējie aizsardzības mehānismi ļauj saimniekam izdzīvot metazoānā. Šie mehānismi kļūst arvien sarežģītāki, attīstoties organismiem. Atšķirībā no mugurkaulnieku deuterostomām, protostomiem trūkst adaptīvās imunitātes, un to aizsardzība balstās uz iedzimtu imunitāti [56]. Sākotnējā aizsardzības līnija pret baktērijām un mikroorganismiem mugurkaulniekiem ir ātra iedzimtu imūnšūnu un molekulu aktivizēšana. Nesen bezmugurkaulnieki ir kļuvuši par kandidātiem iedzimtas imunitātes analīzei, lai atklātu mugurkaulnieku adaptīvās imūnās atbildes stratēģijas un sarežģītību. Bezmugurkaulnieki ir izstrādājuši dažādus aktīvus imūnmehānismus, tostarp pretmikrobu peptīdu veidošanos, koagulāciju, fagocitozi un iekapsulēšanas reakcijas [20, 24]. Šie mehānismi ir atkarīgi no "rakstu atpazīšanas receptoriem" (PRR), iedzimtām imūnmolekulām, kas var atšķirt "pašu" no "ne-paš" membrānas komponentiem.

"Ar patogēnu saistītu molekulāro modeļu" (PAMP) atpazīšana regulē būtisku signalizācijas ceļu sākšanos līdz pat gēnu, kas kodē iekaisuma mediatorus, pretmikrobu peptīdus un fagocitozes regulatorus, aktivizēšanai [32]. Oligochaetes annelīdi (sliekas) ir kļuvuši par paraugu salīdzinošajai imunoloģijai, un tāpat kā dēles izmanto sauszemes un ūdens vides biomonitoringam (B.-T. [48, 52, 53, 72]. Sliekas tiek nodrošinātas ar iedzimtu, augsti attīstītu). , un efektīvus aizsardzības mehānismus pret bīstamiem vides mikroorganismiem.Pirmā mehāniski bioloģiskā aizsardzības līnija, kas atdala annelīdu ķermeni no ārējās vides, ir apvalks, kas sastāv no epidermas un muskuļu slāņiem. Tam ir kutikula ar plānu mukopolisaharīdi un proteīni, kas darbojas kā pretmikrobu barjera [20].

Sliekām šūnu un humorālā imūnsistēma pirmo reizi metazoju evolūcijā darbojas kopā. Tiek uzskatīts, ka šķidrums celomijas dobumā ir atbildīgs par humorālām imunoloģiskām aktivitātēm. Slieku celomiskais dobums ir piepildīts ar šķidrumiem, kas satur brīvus un klejojošus celomocītus un to pigmentētos agregātus, ko sauc par brūnajiem ķermeņiem, kas ir iebrukušo baktēriju un daļiņu atlikumu iekapsulēšanas produkts. Slieku celomiskais šķidrums veic vairākus bioloģiskos procesus, tostarp hemolītiskos, proteolītiskos, citotoksiskos un antibakteriālos [19, 24, 29]. Cēloms tieši sazinās ar ārējo vidi caur muguras porām un savienotajām nefrīda kanāliņām, kas izvada metabolītus. Šīs poras ir iesaistītas arī baktēriju un izsmelto celomocītu izvadīšanā. Stresa apstākļos celomisko šķidrumu un suspendētās šūnas var ātri izvadīt, palielinoties intrakolonālajam spiedienam [24].

Slieku koelomocīti ir būtisks šūnu iedzimtas imunitātes elements. Šīs šūnas atgādina mugurkaulnieku leikocītus gan morfoloģijā, gan funkcijās [33]. Coelomocīti veic plašu uzdevumu klāstu, tostarp šūnu citotoksicitāti, iekapsulēšanu un fagocitozi. Tos var iedalīt divās primārajās apakšpopulācijās: melanocītos un amoebocītos (hialīna un granulēta) [33]. Hialīna un granulētie amoebocīti ir iesaistīti fagocitozē un iekapsulēšanā, izpaužot dažādus PRR [23, 60]. Šīs cirkulējošās šūnas, kas migrē audos no celomiskā dobuma, ir ļoti līdzīgas mugurkaulnieku makrofāgiem, ieskaujošiem vai iekapsulējošiem patogēniem, reaktīvajām skābekļa sugām (ROS) un slāpekļa oksīdam (NO) [39]. Eleocīti ražo plašu bioaktīvo proteīnu klāstu, kas ir iesaistīti humorālajā imūnreakcijā, kā arī ķermeņa detoksikācijā, izmantojot lizosomu sistēmu [24]. Coelomocīti var piedalīties litiskajās reakcijās pret mērķa šūnām un pretmikrobu peptīdu izdalīšanos. Starp imūnmehānismiem transplantācijas eksperimenti ir pierādījuši, ka sliekām pastāv pašapziņa [28].

Annelīdu celomocīti šūnu reakciju rezultātā ātri veido imūnmehānismus pret baktērijām, parazītiem un rauga sēnītēm [59]. Šo ātro reakciju veicina šķīstošās antibakteriālās molekulas, piemēram, lizocīms, lizenīns un lubricīns [22, 42, 68]. Celomocītos tika atklātas ļoti konservētas imunoloģiskās molekulas, piemēram, šūnu virsmas indikatori, analīzei izmantojot citometriju. Konkrēti, celomocīti reaģēja ar zīdītājiem specifiskām antivielām, uzrādot virspusēju pozitivitāti pret antivielām pret CD11a, CD45RA, CD45RO, CDw49b, CD54, b2-M un Ty-1 [30, 34].

Mūsu pētījuma mērķis ir pirmo reizi imūnhistoķīmiski novērtēt TLR2, CD14 un -Tubulīna klātbūtni Lumbricus terrestris (Linnaeus, 1758), plašas, daudzsegmentētas, cilindriskas sliekas, kas pieder Lumbricidae (Annelida, Oligochaeta) ģimenei, koelocītos. , hermafrodīts, 8 līdz 10 cm garš [55]. Zināšanu uzlabošana par bezmugurkaulnieku iekšējo aizsardzības sistēmu var palīdzēt izprast mugurkaulnieku sarežģītāko imunitāti un līdz ar to arī imūnās atbildes evolūciju [63].

materiāli un metodes

Paraugi un audu sagatavošana

Lombricus terrestris paraugi nāk no mūsu laboratorijas histotheca. Iepriekš tie tika ņemti nepiesārņotā atklātā laukā un divas nedēļas aklimatizēti svaigā augsnē, kā ziņoja Licata et al. [51], un pēc tam tika sagatavoti, izmantojot standarta gaismas mikroskopijas metodes. Paraugi tika iegremdēti imūnsistēmā (4 procenti paraformaldehīds) (05-W01030705, BioOptica Milano SpA, Milāna, Itālija) divas stundas. Pēc tam tika apstrādāti ar dehidratējošu etanola skalu (no 30 līdz 100 procentiem etanola) un pēc tam sagatavoti iekļaušanai parafīnā, izmantojot ksilolu.

Kad bija iekļauts, uz katra priekšmetstikliņa tika novietotas divas plānas 3–5 μm sekcijas, kas sagrieztas ar rotējošu mikrotomu.

Histoloģija

Priekšmetstikliņu apstrādei tika izmantoti morfoloģiski un histoķīmiski traipi [4, 6]. Pēc tam šķēles tika rehidrētas, izmantojot progresīvos spirta šķīdumus (no 100 līdz 30 procentiem etanola), destilētā ūdenī pēc deparafinēšanas ksilolā [17], G. [75], pēc tam tās nokrāsoja, izmantojot Mallory trichrome un AB/PAS [3]. . Pēc krāsošanas priekšmetstikliņi tika uzstādīti, izmantojot Eukitt (BioOptica Milano SpA, Milāna, Itālija, Eiropa). Dati par šajā pētījumā izmantotajiem celmiem ir iekļauti 1. tabulā.

Imunofluorescence

Deparafnizētās sekcijas tika apstrādātas ar 5% nātrija borhidrīda šķīdumu, lai novērstu autofluorescenci, pēc tam tika izmantots 2,5% liellopu seruma albumīna (BSA) šķīdums, un pēc tam šķēles inkubēja nakti ar primārajām antivielām pret TLR2, CD14 un -tubulīnu [40]. ]. Pēc tam tika veikta sekundāro antivielu inkubācija. Lai izvairītos no balināšanas, šķēles tika uzstādītas, izmantojot Fluoromount™ Aqueous Mounting Medium (Sigma-Aldrich, Taufkirchen Vācija, Eiropa). Eksperimenti tika veikti bez primārajām antivielām kā negatīvai kontrolei (dati nav parādīti). Lai apstiprinātu, ka primārās antivielas bija imūnpozitīvas, žurku ādas audi tika izmantoti kā pozitīva kontrole (dati nav parādīti) [5, 47, 74].

Sekcijas tika analizētas ar Zeiss LSM DUO konfokālo lāzerskenēšanas mikroskopu ar META moduli (Carl Zeiss MicroImaging GmbH, Jēna, Vācija, Eiropa) ar dažāda viļņa garuma hēlija-neona (543 nm) un argona (458 nm) lāzeriem [7] . Attēlu uzlabošanai tika izmantota Zen 2011 (programmatūra LSM 700 Zeiss, Oberkochen, Vācija, Eiropa). Izmantojot Adobe Photoshop CC versiju 2019 (Adobe Systems, Sanhosē, Kalifornija, ASV), digitālie attēli tika apvienoti saliktā attēlā. Pēc tam fluorescences intensitātes līknes tika novērtētas, izmantojot Zen 2011 "Displeja profila" funkciju [58]. Sīkāka informācija par antivielām ir apkopota 2. tabulā.

Kvantitatīvā analīze

Dati tika savākti kvantitatīvās analīzes veikšanai, pārbaudot desmit sadaļas un divdesmit laukus katrā paraugā. Šūnu pozitivitāte un skaits tika novērtēts, izmantojot ImageJ programmatūru 1.53e. TLR2, CD14 un -Tubulīna pozitīvo celomocītu skaits tika skaitīts, izmantojot SigmaPlot versiju 14.0 (Systat Software, Sanhosē, CA, ASV). Normāli sadalītie dati tika analizēti, izmantojot vienvirziena ANOVA un Stjudenta t-testu. Tiek ziņots par imūnreaktīvo koelocītu skaita vidējām vērtībām un standartnovirzēm (SD): ** p mazāks vai vienāds ar 0.01, * p Mazāks vai vienāds ar 0,05.

Rezultāti

Sliekai Lumbricus terrestris ir monostratificēts epitēlijs un pārklājoša šķiedraina kutikula, kas veido epidermu. Saistītie un muskuļu audi, kas veido lielāko daļu ķermeņa sienas, atrodas zem epidermas. Epidermas epitēlijs saglabā kolagēna kutikulu atšķirīgu no pārējā organisma un ir atbildīgs par šī kutikulas kolagēna ražošanu. Kutikulu, epidermu, garenisko muskuļu un apļveida muskuļus var redzēt, histoloģiski pārbaudot slieku ķermeņa sienas šķērsgriezumu. Epiderma ir morfoloģiski labi definēta; tas ir vai nu viens epitēlija slānis, vai pseidostratificēts; tas sastāv no atbalsta, bazālajām, dziedzeru un maņu šūnām (1. att.). Imunofluorescences analīze, novērojot konfokālo mikroskopu, uzrāda pozitīvus TLR2 (2., 3. att.), CD14 (2. att.) un -Tubulīnam (3. att.) celomocītus, kas izkaisīti epidermā un savienojošajā slānī, kas atrodas zemāk. gareniskajā un gludo muskuļu slānī. TLR2 un CD14 nav pilnībā kolokalizēti viens ar otru, kas liecina, ka šie celomocīti var piederēt divām atšķirīgām ģimenēm (2. att.). Turklāt gļotādas dziedzeru šūnas epidermā bija tubulīna pozitīvas (3. attēls). Analizējot konfokālā mikroskopa "displeja profila" funkciju, mēs apstiprinājām kolokalizācijas fluorescences maksimumus starp pārbaudītajām antivielām.

Kvantitatīvā analīze atklāja līdzīgu pozitīvo koelocītu skaitu atsevišķām pārbaudītajām antivielām, kā parādīts 3.

Diskusija

Saimnieka reakcija pret iebrukušiem patogēniem ir fizioloģiski mehānismi, kas pieder visiem dzīviem organismiem. Kopš pirmo eikariotu šūnu parādīšanās ir attīstījušies vairāki aizsardzības procesi, lai garantētu šūnu integritāti, homeostāzi un saimnieka izdzīvošanu [25]. Bezmugurkaulnieki ir izstrādājuši virkni aizsardzības reakciju, kas efektīvi atpazīst un noņem svešķermeņus, mikrobus vai parazītus. Lai gan hordātiem ir adaptīva imunitāte, lophotrochozoans kā sliekas galvenokārt paļaujas uz iedzimtām imūnsistēmas šūnām, piemēram, fagocītiem (amoebocītiem, celomocītiem), kas ietver filoģenētiski konservētus PRR, lai veicinātu imūnreakciju [41]. Scavenger receptori, TLR un Nod līdzīgi receptori (NLR) ir ievērojami bezmugurkaulnieku pārstāvji. Pēc receptoru-ligandu saistīšanās signāla transdukcija ierosina sarežģītu šūnu reakciju kaskādi, kā rezultātā veidojas viena vai vairākas imūnreakcijā iesaistītās efektormolekulas [61]. Cēlomiskais citolītiskais proteīns (CCF), lipopolisaharīdus saistošais proteīns (EaLBI/BPI) un Toll līdzīgais EaTLR receptors ir trīs PRR veidi, kas līdz šim ir identificēti sliekām [65, 66]. CCF ir identificēts un raksturots kā Eisenia foetida (Savigny, 1826) celomiskā šķidruma un celomocītu imūnmolekula. CCF, saistoties ar mikrobu antigēniem, var izraisīt propenoloksidāzes kaskādi, svarīgu bezmugurkaulnieku imūnmehānismu, kam ir arī opsonizējošas īpašības, tādējādi veicinot fagocitozi [18, 35].

TLR ir evolucionāri konservēti membrānas atpazīšanas receptori [9, 15], kas atpazīst svešus antigēnus, izmantojot PAMP [2], un veicina imūnās atbildes modulāciju [8, 9, 11, 36]. Bodó et al. [24] parādīja TLR klātbūtni uz annelīda oligohetas Eisenia andrei (Bouché, 1972) [24]. Skanta u.c. (2013) izolēta slieka TLR (EaTLR) no E. andrei. Šī receptora lielā intrasugu daudzveidība norāda uz vairāku TLR gēnu klātbūtni E. andrei genomā. Saskaņā ar filoģenētisko pētījumu [66], TLR no anelīdu daudzslāņu Capitella teleta (Blake, Grassle un Eckelbarger, 2009), EaTLR un gliemju un adatādaiņu TLR ir daudz līdzību. Pročazkova et al. izcelts EaTLR un vairāku cisteīna kopu (MCC) EaTLR, kas izteikts visos slieku ķermeņa audos. Pirmais ir īpaši bagātīgs gremošanas sistēmā, bet otrais var ietekmēt embriju attīstību un reakciju pret parazītiem [61]. Turklāt tā klātbūtne celomocītos var būt pārmērīgi izteikta baktēriju uzkrāšanās dēļ [66]. Lumbricus terrestris koelomocīti spēja atpazīt monocītus in vitro kā ne-pašus, apstiprinot to imūnatpazīšanas spēju [62]. Transkriptomikas pētījumi apstiprina 18 TLR klātbūtni daudzšķautņu annelidā Arenicola marina (Linnaeus, 1758) [67].

Mēs iepriekš esam pierādījuši TLR2 klātbūtni vairākos mugurkaulniekiem [4, 11, 12, 16, 46, 54] un urohordatos [14, 45].

Pēc šiem datiem mūsu pētījums pirmo reizi imūnhistoķīmiski raksturoja TLR2 Lumbricus terrestris koelomocītos. Mēs kolokalizējām TLR2 / CD14 un TLR2 / -Tubulīnu, apstiprinot divu veidu celolocītus, kā ziņo Engelmann [33]. Ne visi celomocīti tika kolokalizēti pārbaudītajām antivielām, kas liecina par iespējamu šo šūnu funkcionālo un strukturālo dažādību. Lai gan nav eksperimentālu pierādījumu, TLR2/CD14 kolokalizētu celomocītu klātbūtne var liecināt, ka šīs šūnas varētu būt amoebocīti, kas iesaistīti fagocitozē, savukārt celomocīti, kas ekspresē tikai TLR, var būt melanocītu šūnas, kas iesaistītas imūnreakcijā, bet neveic fagocītu funkcijas [1, 37 , 38], SJ [49, 50], lpp., [57, 71]. Neskatoties uz Bodó et al. kas liecina par TLR neesamību E. andrei melanocītos, izmantojot qPCR [23], TLR2-pozitīvi melanocīti tiek atklāti L. terrestris, kas liecina par atšķirību starp slieku sugām, kā jau tika izvirzīta hipotēze uz kodola genoma bāzes [64].

Eguielor et al pētījums. [31] dēle Glossiphonia complanata (Linnaeus, 1758) morfoloģiski un histoķīmiski identificēja trīs galvenos šūnu tipus (makrofāgiem līdzīgas šūnas, NK līdzīgas šūnas, I un II tipa granulocītus), izmantojot dažādus pretcilvēka marķierus pelēm, kas ir specifiskas makrofāgiem CD14 un CD61 [44] un NK šūnas CD56 un CD57 [43]. Šī krusteniskā reaktivitāte pret antivielām, kas radītas pret zīdītāju CD antigēniem, saskan ar literatūras datiem par filoģenētiskajām korelācijām starp anelīdiem un mugurkaulniekiem [21, 30] un varētu būt šo imūnmolekulu evolūcijas saglabāšanas piemērs.

Peles anti-cilvēka anti-CD24, pretaudzēju nekrozes faktora (TNF)-, anti-CD45RA un anti-CD45RO antivielas ir lokalizētas sliekas Eisenia foetida [30, 34] celomocītu virsmās, kas liecina, ka šīs molekulas ir ļoti konservēts filoģenēzes laikā. Šie pētījumi saskan ar iepriekšējiem pētījumiem, kas parāda, ka celolocītu virsmas antigēni ir krusteniski reaģējoši ar antivielām pret CD14, CD11b un CD11c, kas ražotas zīdītājā Temiste petricola (Amor, 1964), raksturojot fagocītus, kas ir pozitīvi pret anti-CD14, CD11b un CD11c antivielām [21. ]. Saskaņā ar šiem datiem mūsu rezultāti parādīja, ka fagocītiskās šūnas ir imūnreaktīvās pret CD14 Lumbricus terrestris.

Turklāt mēs parādījām coelomocītu imūnpozitivitāti pret -Tubulīnu, kas kolokalizēts ar TLR2, parādot saikni starp citoskeletu, mikrotubulām un iedzimtu imūnreakciju, ko mediē TLR2. TLR2 un -Tubulīna kolokalizācija apstiprina tubulīna iesaistīšanos TLR transportēšanā uz membrānas virsmas. Heli Uronen-Hansson et al. [70] uzrādīja plašu TLR2 un TLR4 tubulovezikulāru ekspresiju uz iekšējiem un ārējiem monocītiem, kā arī dendrītiskajās šūnās. Tā kā šie receptori ir kolokalizēti ar -tubulīnu un tieši saistīti ar Golgi kompleksu, mikrotubulas var kalpot kā vads TLR pūslīšu pārnešanai [70]. Tubulīns atrodas arī epidermā, palīdzot saglabāt tās integritāti [27] un iejaucoties brūču dzīšanas procesā [73], tādējādi palīdzot iedzimtajai imūnsistēmai, kā ziņots arī pētījumos par Nematoda Caenorhabditis elegans (Maupass, 1900) [27, 69].

Kolokalizācija, ko apstiprina konfokālā mikroskopa "displeja profila" funkcija, apstiprina iegūtos rezultātus, izceļot fluorescences maksimumu, kas atbilst antivielu saistīšanai ar attiecīgajiem antigēniem.

Noslēgumā jāsaka, ka mūsu pētījumā ar konfokālo mikroskopiju tika identificēti koelomocīti, kas pirmo reizi ir imūnreaktīvi pret TLR2, CD14 un -Tubulīnu Oligochaeta annelid Lumbricus terrestris. Šie dati ne tikai apstiprina šo molekulu svarīgo evolucionāro saglabāšanu, bet arī padziļina mūsu zināšanas par bezmugurkaulnieku, īpaši anelīdu, iekšējo aizsardzības sistēmu, un var sniegt noderīgas norādes turpmākiem pētījumiem, uzlabojot sarežģīto iedzimto imūnsistēmas mehānismu izpēti. augšējie mugurkaulnieki.

Iestāžu pārbaudes padomes paziņojums

Šim pētījumam tika atcelta ētiskā pārbaude un apstiprināšana, jo paraugiem netika piemērotas eksperimentālas procedūras.

Autoru ieguldījums

Konceptualizācija, Alessio Alesci; formālā analīze, Alessio Alesci un Angelo Fumia; izmeklēšana, Alesio Alesci, Džoele Kapiljo, Andželo Fumia, Marko Albano, Emanuels Mesīna, Nunziakarla Spano, Simona Pergolizi un Eiženija Rita Lauriano; datu apkopošana, Alessio Alesci, Gioele Capillo, Angelo Fumia, Marco Albano, Emmanuele Messina, Nunziacarla Spanò, Simona Pergolizzi un Eugenia Rita Lauriano.; rakstīšana — oriģinālā uzmetuma sagatavošana, Alessio Alesci; rakstīšana — pārskatīšana un rediģēšana, Alesio Alesci, Džoele Kapillo, Nunziacarla Spanò, Simona Pergolizzi un Eugenia Rita Lauriano; vizualizācija, Alessio Alesci un Angelo Fumia; uzraudzība, Eugenia Rita Lautiano. Visi autori ir izlasījuši un piekrituši publicētajai manuskripta versijai.

Finansējums

Šis pētījums nesaņēma ārēju finansējumu.

Datu un materiālu pieejamība

Šajā pētījumā sniegtie dati ir pieejami rakstā.

Deklarācijas

Ētikas apstiprinājums un piekrišana dalībai

Nav piemērojams.

Konkurējošas intereses

Autori paziņo, ka nav interešu konflikta.

Atsauces

1. Aderem A, Underhill DM. Fagocitozes mehānismi makrofāgos. Annu Rev Immunol. 1999;17(1):593–623. https://doi.org/10.1146/annur ev.immunol.17.1.593.

2. Akira S, Uematsu S, Takeuchi O. Patogēnu atpazīšana un iedzimta imunitāte. Šūna. 2006;124(4):783–801. https://doi.org/10.1016/j.cell.2006.02.015.

3. Alesci A, Albano M, Savoca S, Mokhtar DM, Fumia A, Aragona M, Lo Cascio P, Hussein MM, Capillo G, Pergolizzi S, Spanò N, Lauriano ER. Imūnmolekulu konfokālā identifikācija Zebrafsh ādas kluba šūnās (Danio rerio, Hamilton 1882) un to iespējamā loma imunitātē. Bioloģija. 2022;11(11):1653. https://doi.org/10.3390/biology11111653.

4. Alesci A, Capillo G, Fumia A, Messina E, Albano M, Aragona M, Lo Cascio P, Spanò N, Pergolizzi S, Lauriano ER. Zarnu dendritisko šūnu konfokālais raksturojums no miksīniem līdz teleostiem. Bioloģija. 2022;11(7):1045.https://doi.org/10.3390/biology11071045.

5. Alesci A, Capillo G, Mokhtar DM, Fumia A, D'Angelo R, Lo Cascio P, Albano M, Guerrera MC, Sayed RKA, Spanò N, Pergolizzi S, Lauriano ER. Antimikrobiālā peptīda Piscidin1 ekspresija milzu mudskipper Periophthalmodon schlosseri (Pallas, 1770) žaunu tuklo šūnās. Int J Mol Sci. 2022;23(22):13707. https://doi.org/10.3390/ijms232213707.

6. Alesci A, Cicero N, Fumia A, Petrarca C, Mangifesta R, Nava V, Lo Cascio P, Gangemi S, Di Gioacchino M, Lauriano ER. Smago metālu histoloģiskā un ķīmiskā analīze nierēs un Boops Boops žaunās: melanomakrofāgu centri un stieņu šūnas kā vides biomarķieri. Toksiskas vielas. 2022;10(5):218. https://doi.org/10.3390/toxics10050218.

7. Alesci, A., Fumia, A., Miller, A., Calabrò, C., Santini, A., Cicero, N., & Lo Cascio, P. (2022). Spirulīna veicina makrofāgu agregāciju zebrafish (Danio rerio) aknās. Nat Prod Res, 1.–7. https://doi.org/10.1080/14786419. 2022.2089883.

8. Alesci, A., Gitto, M., Kotańska, M., Lo Cascio, P., Miller, A., Nicosia, N., Fumia, A., & Pergolizzi, S. (2022). COVID-19 mRNS vakcīnu imunogenitāte, efektivitāte, drošība un psiholoģiskā ietekme. Human Immunol, S0198885922001586. https://doi.org/10.1016/j.humimm.2022.08.004.

9. Alesci, A., Lauriano, ER, Aragona, M., Capillo, G., & Pergolizzi, S. (2020). Mugurkaulnieku Langerhansa šūnu marķēšana no zivīm līdz zīdītājiem. Acta Histochemica, 122(7): 151622. https://doi.org/10.1016/j.acthis.2020.151622.

10. Alesci A, Lauriano ER, Fumia A, Irrera N, Mastrantonio E, Vaccaro M, Gangemi S, Santini A, Cicero N, Pergolizzi S. Imūnās šūnas, depresija, stress un psoriāze: varētu izmantot dabiskos produktus Esiet izpalīdzīgs? Molekulas. 2022;27(6):1953.

11. Alesci, A., Pergolizzi, S., Capillo, G., Lo Cascio, P., & Lauriano, ER (2022). Stieņu šūnas zelta zivtiņas nierēs (Carassius auratus, Linnaeus 1758): gaismas un konfokālās mikroskopijas pētījums. Acta Histochemica, 124(3):151876.

12. Alesci, A., Pergolizzi, S., Fumia, A., Calabrò, C., Lo Cascio, P., & Lauriano, ER (2022). Mastu šūnas zelta zivtiņas (Carassius auratus) zarnās: imūnhistoķīmiskais raksturojums. Acta Zoologica.

13. Alesci A, Pergolizzi S, Fumia A, Miller A, Cernigliaro C, Zaccone M, Salamone V, Mastrantonio E, Gangemi S, Pioggia G, Cicero N. Imūnsistēma un grūtnieču psiholoģiskais stāvoklis COVID laikā-19 .Pandēmija: vai mikroelementi spēj uzturēt grūtniecību? Uzturvielas. 2022;14(12):2534. https://doi.org/10.3390/nu14122534. 14. Alesci, A., Pergolizzi, S., Lo Cascio, P., Capillo, G., & Lauriano, ER (2022). Vasoaktīvo zarnu peptīdu un nodevām līdzīgo receptoru 2 imūnreaktīvo šūnu lokalizācija urochordāta Styela plicata endostilā (Lesueur, 1823). Microsc Res Tech, https://doi.org/10.1002/jemt.24119.

15. Alesci A, Pergolizzi S, Lo Cascio P, Fumia A, Lauriano ER. Neironu reģenerācija: mugurkaulnieku salīdzinošs pārskats un jaunas perspektīvas neirodeģeneratīvām slimībām. Acta Zoologica. 2021. gads. https://doi.org/10. 1111/azo.12397.

16. Alesci A, Pergolizzi S, Savoca S, Fumia A, Mangano A, Albano M, Messina E, Aragona M, Lo Cascio P, Capillo G, Lauriano ER. Broadgilled Hagfsh Eptatretus Cirrhatus zarnu kausa šūnu noteikšana (Forster, 1801): konfokālās mikroskopijas novērtējums. Bioloģija. 2022;11(9):1366.https://doi.org/10.3390/biology11091366.

17. Alturkistani HA, Tashkandi FM, Mohammedsaleh ZM. Histoloģiskie traipi: literatūras apskats un gadījuma izpēte. Global J Health Sci. 2015;8(3):72.https://doi.org/10.5539/gjhs.v8n3p72.

18. Beschin A, Bilej M, Brys L, Torreele E, Lucas R, Magez S, De Baetselier P. Convergent evolution of cytokines. Daba. 1999;400(6745):627–8.https://doi.org/10.1038/23164.

19. Bilej M, De Baetselier P, Beschin A. Antimikrobiālā aizsardzība pret slieku. Folia Microbiol. 2000;45(4):283–300. https://doi.org/10.1007/BF028 17549.

20. Bilej M, Procházková P, Šilerová M, Josková R (2010) Earthworm Immunity. In: Söderhäll K, edotiro. Invertebrate Immunity, Vol. 708. Bostona: Springer; lpp. 66–79). https://doi.org/10.1007/978-1-4419-8059-5_4.

21. Blanco GAC, Escalade AM, Alvarez E, Hajos S. LPS-induced stimulation of phagocytosis in the sipunculan worm Themiste petricola: Iespējama cilvēka CD14, CD11B un CD11C krusteniski reaģējošu molekulu iesaistīšanās. Dev Comp Immunol. 1997;21(4):349–62. https://doi.org/10.1016/ S0145-305X(97)00007-4.

22. Bodó K, Boros Á, Rumpler É, Molnár L, Böröcz K, Németh P, Engelmann P. Identification of novel lubricin homologs in Eisenia andrei earthworms. Dev Comp Immunol. 2019; 90:41–6.

23. Bodó, K., Ernszt, D., Németh, P., & Engelmann, P. (2018). Atsevišķi ar imūnsistēmu un aizsardzību saistīti molekulārie pirkstu nospiedumi atdalītās Eisenia andrei slieku coeloocītu apakšgrupās. Bezmugurkaulnieku izdzīvošana J, 338–345.

24. Bodó K, Kellermayer Z, László Z, Boros Á, Kokhanyuk B, Németh P, Engelmann P. Traumu izraisīta iedzimta imūnreakcija slieku segmenta atjaunošanās laikā, Eisenia andrei. Int J Mol Sci. 2021;22(5):2363.

25. Buchmann, K. (2014). Iedzimtas imunitātes evolūcija: norādes no bezmugurkaulniekiem caur zivīm līdz zīdītājiem. Imunoloģijas robežas.

For more information:1950477648nn@gmail.com