Cistanche aizsargājošā iedarbība pret H2O2/UVB izraisītu ādas fibroblastu kolagēna degradāciju, izmantojot Hsa-microRNS-4535-mediētu TGF/Smad signālu Ⅱ

May 06, 2023

DISKUSIJA

Šajā pētījumā mēs noskaidrojām, kacistanche aizsargājošā lomatiek mediēts, vājinot hsa-miR- 4535, kas vērsta uz Smad4, tādējādi regulējot Smad2/3/4 signālu pārraidi, kā arī kolagēna sintēzi ādā, kas ir pakļauta H2O2/UVB izraisīti ādas bojājumi in vitrounin vivo. Mūsu atklājumus var apkopot kā sešus galvenos punktus: (1) cistanche vājināja H2O2-inducēta HS68 šūnu novecošanās, bet ne apoptoze pie 30 µM devas; (2) H2O2/UVB izraisītsintracelulāri un mitohondrijil Pēc tam ROS veidošanās un MMP nelīdzsvarotība tika mainītacistanche ārstēšana; (3) cistanche ievērojami uzlaboja TGF / Smad signalizāciju, kā arī Samd2/3/4 kompleksa aktivizēšanu H.2O2-atklātas šūnas; (4) hsa-miR-4535 regulēšana, ko veic H2O2/UVB tika nomākta pēc tamcistanche ārstēšana; (5) hsa-miR- 4535 ir iesaistīts TGF/Smad signalizācijas regulēšanā, izmantojotmērķējot uz Smad4, lai traucēta kolagēna sintēze H2O2/UVB pakļautas šūnas; (6)lokāla cistanche lietošanauzkaila muguras ādapeles ievērojami samazināja UVB izraisīto iedarbībuādas fotonovecošanās,grumbu veidošanās, ādas hiperplāzija, un pasliktināšanāsno TGF / Smad signalizācijas ceļiem.


cistanche proteictive effect on skin care research


10. attēls. Cistanča ietekme uz UVB izraisītu C57BL6/J kailas peles ādas fotobojājumu. (A) Shematiskā procedūra eksperimentiem ar dzīvniekiem. Četras nedēļas vecu C57BL6/J kailu peļu (n=6) ​​muguras āda tika pakļauta UVB starojuma iedarbībai un tika apstrādāta ar cistanču reizi divās dienās 8 nedēļas (B). Fotogrāfija, kurā attēlota grumbu veidošanās uz kaila muguras ādas. pelēm UVB iedarbības dēļ, kam seko lokāla cistanche lietošana.

cistanche proteictive effect on skin care research

Noklikšķiniet šeit, lai uzzinātu par Cistanche ārstēšanu ādas mazināšanai Pkarstuma bojājumi

Cilvēka āda sastāv no diviem slāņiem: epidermas un dermas. Theādas dermāsatur saistaudus, matu folikulus un sviedru dziedzerus. Cilvēka ādas dermas fibroblasti ir iestrādāti dermā [33]. Dažādi pētījumi liecina, ka gan iekšējā, gan ārējā novecošanās izraisa ādas fibroblastu novecošanos ROS uzkrāšanās dēļ [16, 34, 35]. Tādējādi novecojuši cilvēka dermas fibroblasti neatgriezeniski aptur šūnu ciklu un zaudē proliferācijas spējas [36]. H2O2 vai UVB apstarošana ir labi raksturoti avoti, lai paātrinātu ROS veidošanos cilvēka dermas fibroblastos [37, 38]. Šeit mēs noskaidrojām, ka apstrāde ar cistanche (10–50 μM) neizraisīja citotoksicitāti, bet gan būtiski mazināja H2O2/UVB izraisītu šūnu nāvi cilvēka dermas fibroblastos (1. E, 1. attēls). Turklāt apstrāde ar cistanšu nomāca H2O2/UVB izraisītu p16, p21 un SA- -gal-pozitīvo šūnu skaita regulēšanu (2.D attēls). Tādējādi cistanche demo aizsargājošā iedarbība pret H2O2 vai UVB bojājumiem var būt saistīta ar dažādu ROS avotu vai mitohondriju integritātes nomākšanu.


cistanche proteictive effect on skin care research

cistanche proteictive effect on skin care research

11. attēls. Lokālā cistanche lietošana vājina UVB izraisīto iedarbībuādas hiperplāzijaun kolagēna noārdīšanās C57BL6/J kailo peļu muguras ādā. Ādas audi tika sērijveidā sadalīti un iekrāsoti ar H&E, Masona trihromu un imūnhistoķīmiski p-Smad2/3 Smad4 un -gal. H&E krāsošana parādīja epidermas biezumu. Divvirzienu sarkanās bultiņas norāda uz epidermas sabiezēšanu. Masona trihroma krāsošana parādīja kolagēna šķiedru saturu dermas slāņos. Kolagēna šķiedras izskatās zilas. LD, maza deva; HD, liela deva.

cistanche proteictive effect on skin care research


Cistancheziņots, ka dažādās šūnās, piemēram, keratinocītos un kardiomiocītos, bija anti-apoptotiskas un antioksidanta īpašības [13, 39, 40]. Cistanche perorāla ievadīšana efektīvi nomāca streptozotocīna izraisītu aknu bojājumu diabēta žurkām, samazinot mitohondriju oksidatīvos bojājumus un uzlabojot Nrf2 antioksidantu signālu pārraidi [13, 41]. Citi pētījumi ir parādījuši, ka cistanche mazināja ciklofosfamīda izraisītu hepatotoksicitāti un cisplatīna izraisītu nefrotoksicitāti, mazinot oksidatīvo stresu un iekaisumu [42, 43]. Ādas fibroblastu pakļaušana UVB vai H2O2 iedarbībai izraisa ROS uzkrāšanos mitohondrijās, izraisot mitohondriju fragmentāciju un šūnu novecošanos [44]. Iepriekšējais pētījums parādīja, ka sadrumstaloti mitohondriji pasliktina kolagēna ražošanu [45]. Mūsu pētījums liecināja, ka cistanche piemīt radikālas attīrīšanas spējas, lai novērstu ROS izraisītu mitohondriju membrānas potenciāla nelīdzsvarotību un ROS uzkrāšanos UVB un H2O2-inducētās šūnās. (3A–3C attēls). Jaunākie pētījumi liecina, ka ādas fibroblasti ir atbildīgi par ECM bagātas vides organizēšanu,


cistanche proteictive effect on skin care research

12. attēls. Cistanche ietekme uz TGF/Smad signālu un hsa-miR-4535 ekspresiju ar UVB apstarotām pelēm. (A un B) hsa-miR-4535 un Smad4 mRNS līmenis no UVB iedarbībai pakļautu peļu muguras ādas tika noteikts ar qRT-PCR. (C) TGF , p-smad2/3 un Smad4 olbaltumvielu līmenis muguras ādas audos tika noteikts ar Western blotēšanu. -tubulīns tika izmantots kā slodzes kontrole. Dati tiek parādīti kā vidējais ± SD. Tiek parādīti rezultātu kvantitatīvie rādītāji; *P < 0.05, **P < 0.01 pret transportlīdzekļa kontroles grupu; #P < 0,05, ##P < 0,01 pret UVB plus transportlīdzekļu grupu.


pārsvarā sastāv no I un III tipa kolagēna [46]. I un III tipa kolagēna homeostāze būtībā ir atbildīga par ādas strukturālā un mehāniskā atbalsta uzturēšanu [47]. Jaunie pierādījumi liecina, ka novecošanas laikā rodas bagātīgs ROS, kā rezultātā pakāpeniski tiek zaudēti kolagēna saišķi dermas slāņos un tādējādi tiek veicināta grumbu veidošanās traucēta TGF / Smad ceļa un paaugstinātas MMP ekspresijas dēļ [48, 49].cistanche mediētsTGF/Smad signālu aktivizēšana rada kolagēnu, kas uztur ādas integritāti. Tomēr tam ir atšķirīga ietekme uz vēža šūnām; aknu vēža gadījumā,cistanche-apstrādeinhibēja HepG2 šūnu proliferāciju, aktivizējot TGF / Smad signalizāciju [50]. Turpretī cistanche inhibēja TGF / Smad signālu, kā arī inaktivēja Smad3, kā rezultātā tika kavēta prostatas un aizkuņģa dziedzera vēža šūnu augšana [51]. Tomēr cistanche loma TGF / Smad signalizācijāādas dermas fibroblastipalika nezināms. Šeit mēs novērojām, ka cistanche pārregulēja COL1A1 un COL3A1 ekspresiju, kas tika samazināta ar H2O2 / UVB apstrādātajām šūnām, aktivizējot TGF / Smad signālu (4A–4C, 8E, 9A attēls). Turklāt H2O2/UVB izraisītā MMP-1 indukcija tika novērsta pēc apstrādes ar cistanču (4.A, 9.A attēls). Mūsu atklājumi liecina, ka cistanche aizsargā dermas fibroblastus no H2O2 / UVB izraisītiem bojājumiem, aktivizējot TGF / Smad signalizāciju un izraisot kolagēna ražošanu.


cistanche proteictive effect on skin care research

Ādas dermas kolagēna attīstībair sarežģīts fizioloģisks process, un ir pierādīts, ka ar mikroRNS saistīta regulēšana veicina ECM pārveidošanu un organizēšanu [23, 52, 53]. Kolagēns, elastīns un hialuronskābe (HA) ir trīs galvenie proteīni, kas uztur ādas integritāti. Uzkrājošie pierādījumi liecina, ka vairākas mikroRNS ir iesaistītas ādas novecošanā, izmantojot ECM regulējumu. miR-181a tika pārregulēts novecojošos cilvēka dermas fibroblastos un ļāva kolagēnam XVI modulēt ECM komponentus [54]. Interesanti, ka augsta miR-23a-3p ekspresija var izraisīt ādas novecošanos, tieši nomācot hialuronāna sintāzi 2, vienu no transmembrānas HA sintāzes izoenzīmiem, kas sintezē HA [21]. Nesen tika ziņots, ka dažādi dabiskie savienojumi, izmantojot mikroRNS regulēšanu, mazina ādas novecošanos [55–57]. Turklāt tiek ziņots, ka cistanche bija iesaistīta mikroRNS regulēšanā holangiokarcinomas un hepatocelulārā karcinomas gadījumā un izraisīja šūnu augšanas un metastāžu nomākšanu [58, 59]. Līdz šim neviens pētījums nav identificējis molekulāro mehānismu, piemēram, mikroRNS regulēšanuapstrādāts ar cistanšucilvēka ādas dermas fibroblastu šūnas. Šeit mēs analizējām mikroRNS masīvu profilus, lai identificētu vairākas mikroRNS, kas atšķīrās starp kontroli un 30 µMapstrādāts ar cistanšugrupām (5.A attēls). Izmantojot miRDB un TargetScanHuman datu bāzes, mēs paredzējām Smad4 kā hsa-miR-4535mRNS mērķis (5.B attēls). hsa-miR-4535 ekspresija tika pazemināta pēc cistanche apstrādes H2O2/UVB inducētās šūnās (6.C, 9.B attēls). Turpretim tā mērķa mRNS-Smad4 ekspresija tika ievērojami kavēta H2O2/UVB pakļautajās šūnās un palielinājās pēc apstrādes ar cistanču (6.D, 9C attēls). Dažādi pētījumi liecina, ka ROS darbojas kā starpposma stimulējoši stresa izraisīti transkripcijas faktori, piemēram, p53, NF-κB un HIF [60]. Tāpēc mēs secinājām, ka noteiktas miRNS var modulēt, regulējot šos transkripcijas faktorus. Izmantojot transkripcijas faktoru saistošo vietu datubāzi (PROMO), mēs noskaidrojām, ka hsa-miR-4535 promotorā ir viens iespējamais p53 saistošais elements. Mūsu turpmākajā pētījumā galvenā uzmanība tiks pievērsta p53 transkripcijas regulēšanai hsa-miR-4535 promotorā. Turklāt H2O2-inducēto kolagēna noārdīšanos nevarēja vājināt hsa miR-4535 pārmērīgi ekspresētās vai si-Smad4 transfektētās šūnās pat pēc apstrādes ar cistanču (8.C, 8.E attēls). Šie atklājumi vēl vairāk apstiprina hsa-miR- 4535 iesaistīšanos kolagēna sintēzes regulēšanā, mērķējot uz Smad4.



cistanche proteictive effect on skin care research

13. attēls. Cistanča darbības mehānisma shematiskā diagramma. cistanche uzlabo TGF/Smad kolagēna sintēzes ceļus, samazinot H2O2-inducēto has-mikroRNS-4535, lai uzlabotu fotonovecošanos cilvēka ādas dermas fibroblastos. Saīsinājumi: ECM: ekstracelulāra matrica; TGF: transformējošais audzētais faktors beta; T RI: TGF receptoru I tips; T RII: TGF receptoru tips II.


Uzkrājošie pierādījumi liecināja, ka UVB izraisīta ROS uzkrāšanās var pasliktināt ādas integritāti, mainot ECM komponentus, kā arī samazinot kolagēna, elastīna un HA sekrēciju un tādējādi veicinot grumbu veidošanos vai ādas vēža progresēšanu [61, 62]. Dabiskus savienojumus saturošu kosmētikas līdzekļu lokāla lietošana aizsardzībai pret saules apdegumiemvarētu efektīvi mazināt UVB izraisītos bojājumus [63]. Turklāt suberīnskābes uztura bagātinātājs aizsargāja SKH-1 bezspalvainais peles no UVB izraisītas kolagēna degradācijas un grumbu veidošanās [64]. Šajā pētījumā mēs atklājām, ka lokāla cistanche lietošana mazināja UVB izraisītus ādas fotobojājumus, mazinot ādas hiperplāziju, grumbu veidošanos un kolagēna sintēzi (10.B, 11., 12. attēls). Tomēr apstrāde ar cistanche būtiski nepalielināja TGF/Smad signalizāciju, salīdzinot ar UVB pakļauto grupu in vivo pētījumā (12.C attēls). Kopējie proteīna lizāti no ādas, neatdalot dermas un epidermas slāņus Western blot analīzei, nespēja noteikt precīzu cistanche lomu TGF / Smad signālu regulēšanā. Tomēr Smad 4 un p-smad2/3 IHC iekrāsošanās un kolagēna daudzums (11. attēls) tika palielināts peles dermas slāņos, lietojot cistanche, parādot cistanche kolagēna veicinošo lomu. Kopumā šie atklājumi liecina, ka cistanche var iekļūt epidermā un sasniegt dermu, kur tā iedarbojās.kolagēna ražošanas spējas, lai nomāktu UVB izraisītus fotobojājumus (13. attēls).

cistanche proteictive effect on skin care research

Visbeidzot, mūsu atklājumi liecināja, ka cistanche aizsargā pret H2O2 / UVB izraisītu ROS veidošanos, MMP nelīdzsvarotību, šūnu novecošanos un kolagēna degradāciju cilvēka dermas fibroblastos. Cistanche dermo aizsargājošā iedarbība bija saistīta ar hsa-miR-4535 inhibīciju un Smad2/3/4 kompleksa aktivizēšanu, lai uzlabotu kolagēna sintēzi. Smad2/3/4 kompleksa aktivāciju regulēja hsa-miR-4535, saistoties ar Smad4-3′-UTR. Tāpēc cistanche aizsargmehānisms pret H2O2/UVB izraisītiem ādas bojājumiem var ietvert Smad4/kolagēna sintēzes kavēšanu ar hsa-miR- 4535


MATERIĀLI UN METODES

Šūnu kultūras un ārstēšana

HS68 cilvēka dermas fibroblasti tika iegūti no Bioresursu savākšanas un izpētes centra (BCRC, Hsinchu, Taivāna) un tika uzturēti Dulbecco modificētajā ēteriskajā barotnē (DMEM, Thermo Fisher Scientific, MA, ASV), kas satur 10 procentus liellopu augļa seruma (Invitrogen, CA, ASV). ), 2 mM L-glutamīna (Sigma-Aldrich, MO, ASV), 100 V/ml penicilīna (Sigma-Aldrich) un 100 ug/ml streptomicīna (Sigma Aldrich) 37 grādu temperatūrā un 5% CO2. Lai novērtētu cistanche ietekmi uz H2O2-inducētiem šūnu bojājumiem, HS68 šūnas tika apstrādātas ar 200 μM H2O2 1 stundu un pēc tam kopā ar cistanche (282200, Sigma-Aldrich) 23 stundas. Šūnas tika mazgātas ar PBS un ievietotas 1 ml svaigā PBS pirms UVB iedarbības. UVB starojumam šūnas tika pakļautas šķērssaistītāja (CX-2000, Upland, CA, ASV) un UVB spuldzēm ar intensitāti 40 mJ/cm2 un pēc tam apstrādātas ar cistanšu.

MTT testi

HS68 šūnu dzīvotspēja pēc apstrādes tika mērīta, izmantojot MTT testu. HS68 šūnas tika iesētas 96-iedobju plāksnēs un apstrādātas ar 200 μM H2O2 1 stundu vai apstarotas ar 40 mJ/cm2 UVB un pēc tam inkubētas ar dažādu koncentrāciju cistanche (10, 20, 30 μM) 23 stundas. Pēc 24 stundām barotne tika aizstāta ar 100 μL MTT (3-(4,5-dimetiltiazol-2-il)-2,5-difeniltetrazolija bromīds) šķīdums (0,5 mg/ml; 5 mg/ml izejas šķīdums PBS tika atšķaidīts ar barotni līdz 0,5 mg/ml) 4 stundas 37 grādu temperatūrā. Pēc tam purpursarkanās krāsas formazāns tika izšķīdināts 100 μL dimetilsulfoksīda (DMSO) un optiskais blīvums pie 570 nm tika mērīts, izmantojot spektrofotometru (Bio-Rad, Hercules, CA, ASV).

Pārejoša transfekcija

Plazmīda, kas kodē Smad4-3′-UTR pmirGLO duālās luciferāzes miRNS mērķa ekspresijas vektorā, tika iegādāta no GENEWIZ. Cilvēka siRNS Smad4 (ID SASI_Hs01_00207793) un negatīvās kontroles siRNS (SIC001) tika iegādātas no Sigma-Aldrich. HS68 šūnas tika transficētas ar hsa-miR-4535 inhibitoru (anti- sajūtu RNS), hsa-miR-4535 imitācija (senseRNS), miRNS negatīvā kontrole, Smad4 siRNS, izmantojot jetPRIME® (Polyplus Transfection Inc, Illkirch, Francija) saskaņā ar ražotāja protokolu. Pēc tam šūnas 24 stundas inkubēja ar transfekcijas kompleksiem.

Mikromasīvu analīze

Kopējā RNS tika ekstrahēta no kontroles, ar 10 μM un 30 μM galanīnu apstrādātas HS68 šūnas un pēc tam analizēta ar miRNS profilēšanu, izmantojot miRNA Microarray pakalpojumus (Human miRNA OneArray®; pakalpojuma kods: 1h216080404;).

Luciferāzes reportiera tests

Šūnas tika kopīgi transfekētas ar savvaļas tipa un mutantu luciferāzes Smad4-3′-UTR-WT vai Smad4-3′-UTR-MT reportieru konstrukcijām, attiecīgi, un iekšējās kontroles luciferāzes plazmīdām. Pēc transfekcijām luciferāzes aktivitātes tika noteiktas ar Dual-Glo Luciferase Assay System (Promega, Sunnyvale, CA, ASV) saskaņā ar ražotāja norādījumiem. Plāksnes tika nolasītas ar Reporter Microplate Luminometer (Turner Biosystems, Sunnyvale, CA, ASV). Relatīvās luciferāzes aktivitātes tika normalizētas līdz Renilla luciferāzes aktivitātei.

Western blot analīze

Šūnas tika mazgātas, izmantojot 1x fosfātu buferšķīdumu (PBS) un lizētas līzes buferšķīdumā (50 mM Tris bāzes (pH7,5), {{10}},5 M NaCl, 1 mM EDTA (pH 8,0), 1 mM -merkaptoetanola, 1% NP-40, 1% glicerīna un proteāzes inhibitoru kokteiļu tabletes (Roche Molecular Biochemicals, Augšbavārija, Vācija) 30 minūtes uz ledus un pēc tam centrifugēja 12,000 × g 10 minūtes 4 grādu temperatūrā. Supernatanti tika savākti 1,5 ml mikrocentrifūgas mēģenēs. Olbaltumvielu koncentrācija šajos supernatantos tika noteikta ar Bredforda metodi (Bio-Rad, Hercules, CA, ASV). Paraugi kas satur vienādus daudzumus proteīna (20 ug), tika atdalīti ar 6–12 procentu gradienta nātrija dodecilsulfāta-poliakrilamīda gēla elektroforēzi (SDS-PAGE) un pēc tam pārnesti uz polivinilidēna difluorīda (PVDF) membrānām (Millipore, Bedford, MA, ASV). Membrānas tika bloķētas, izmantojot bloķējošu buferšķīdumu (5 procenti beztauku sausais piens, 20 mM Tris-HCl, pH 7,6, 150 mM NaCl un 0,1 procents Tween 20) 1 stundu RT. Pēc tam membrānas inkubēja ar primārajām antivielām (1: 1,000 atšķaidījums) pret TGF 1 (sc-31609, Santa Cruz, CA, ASV), p-smad2/3 (sc- 11769, Santa Cruz), Smad4 (sc{{ 50}}, Santakrusa), COL1A1 (sc-28657, Santa Cruz), COL3A1 (sc-271249, Santa Cruz), p16 (10883-1-AP, Proteintech), p21 (sc{ {60}}, Santakrusa), MMP-1 (sc-1731, Santa Cruz), GAPDH (sc-32233, Santa Cruz) un Histon H1 (sc-10806 , Santa Cruz) naktī pie 4 grādiem. Pēc tam tos inkubēja ar atbilstošām sekundārajām antivielām (1:80, 000 atšķaidījums), prettrušu (A0545), pretpeles (A9044) vai pretkazas (A5420) IgG (Santa Cruz Biotechnology) 1 stundu RT. Imunobloti tika atklāti ar pastiprinātas hemiluminiscences (ECL) mārrutku peroksidāzes (HRP) substrātu (Millipore), izmantojot ImageQuant LAS4000 mini (GE Healthcare Life Sciences, Little Chalfont, Apvienotā Karaliste).

Kodolproteīna ekstrakcija

Citosola un kodola frakcijas tika izolētas, izmantojot Nuclear/Cytosol Fractionation Kit (BioVision, Milpitas, CA, USA) saskaņā ar ražotāja norādījumiem. Īsumā šūnas tika savāktas un lizētas citozola ekstrakcijas buferī (CEB), kas satur 1 mM DTT un proteāzes inhibitorus. Pēc centrifugēšanas pie 12, 000 apgr./min 2 minūtes, supernatanti (citozola frakcijas) tika pārnesti uz jaunām mēģenēm. Pēc tam tika pievienots kodola ekstrakcijas buferis (NEB), kas papildināts ar 1 mM DTT un proteāzes inhibitoriem, maisīja vorteksu 15 sekundes un inkubēja 10 minūtes 40 minūtes. Olbaltumvielu saturs tika kvantitatīvi noteikts ar Bredforda testu (Bio-Rad), un olbaltumvielas tika atdalītas ar 8% līdz 12% gradienta SDS-PAGE Western blot analīzei.

RNS ekstrakcija un qRT-PCR

Kopējā RNS tika ekstrahēta, izmantojot Direct-zol™ RNA MiniPrep komerciālo komplektu (Zymo Research Corporation, CA, ASV) saskaņā ar ražotāja protokolu [65, 66]. miRNS tika reversi transkribētas uz cDNS, izmantojot miRNS cDNS sintēzes komplektu (Takara, Shiga, Japāna), kā aprakstīts iepriekš [16, 67]. hsa-miR-4535 un Smad4 ekspresija tika noteikta ar reāllaika PCR, izmantojot LightCycler 96 Systems (Roche, Bāzele, Šveice), izmantojot standarta LightCycler 480 SYBR Green I Master protokolu. 10 μL PCR reakcija ietvēra 2 μL cDNS, 5 μL 2 × SyberGreen PCR Mix, 0,5 μL priekšējo praimeru (10 μM), 0,5 μL reverso praimeru (10 μM) un 2 μL ddH2O. Visas reakcijas tika veiktas trīs eksemplāros. MRNS noteikšanai katram gēnam tika noteikts sliekšņa cikls (Ct), un katra gēna ekspresija attiecībā pret GAPDH tika aprēķināta kā 2ΔCt, kur ΔCt=(Cttarget gēns – CtGAPDH). Lai noteiktu miRNS, katram gēnam tika noteikts Ct, un katra gēna ekspresija attiecībā pret U6 rRNS tika aprēķināta kā 2ΔCt, kur ΔCt=(Cthsa-miR-4535 – CtU6 rRNS). MiRNS un mRNS ekspresijas noteikšanai izmantotie priekšējie (F) un reversie (R) primeri bija: hsa-miR-4535 (3′-CAGGG TCGGUCCA5′); cilvēks-Smad4 (F′-TGACCCAAA CATCACCTTCA, R′- ATACGTGGACCCTTCTG GA); cilvēka-GAPDH (F′-ACCCAGAAGACTGTGGA TGG, R′-TTCAGCTCAGGGATGACCTT); pele-Smad4 (′'-GTGGAAGCCACAGGAATGTT, R'-CCCA CTGAAGGACATTCGAT); pele-GAPDH (F′-CCTT CCACAATGCCAAAGTT, R′-GGGTGTGAACCA CGAGAAAT).


Imunofluorescences analīze

HS68 šūnas tika fiksētas, izmantojot 4% paraformaldehīdu 15 minūtes RT, permeabilizētas ar 0,1% Triton X-100 15 minūtes RT un pēc tam bloķētas ar 5% liellopu seruma albumīna 10 minūtes plkst. RT. Pēc tam šūnas tika mazgātas un iekrāsotas ar Alexa Fluor 594 kazas anti-peles IgG vai Alexa Fluor 488 ēzeļa anti-kazu IgG sekundārajām antivielām (Invitrogen, Carlsbad, CA,ASV) 2 stundas RT. Pēc tam šūnas tika mazgātas ar 1 × PBS un iekrāsotas ar DAPI, lai noteiktu šūnu kodolu (bluestain) 1 minūti RT. Attēli Smad4 un p smad2/3 krāsošanai HS68 šūnās tika uzņemti, izmantojot fluorescences mikroskopu (DP73, Olympus, Tokija, Japāna).


Kopējās un mitohondriju ROS noteikšana

Kopējais un mitohondriju ROS tika noteikts, izmantojot 2′,7′-dihlorfluorescīna diacetātu DCFH-DA (D6883, Sigma-Aldrich) un MitoSOX sarkano mitohondriju superoksīda indikatoru (Invitrogen, M36008). HS68 šūnas tika inkubētas ar 5 μM DCFH-DA un 2 μM MitoSOX 37 grādu temperatūrā 30 minūtes. Pēc tam šūnas tika mazgātas ar 1 × PBS un iekrāsotas ar DAPI, lai noteiktu šūnu kodolu (zilu traipu) 1 minūti RT. Visi paraugi tika analizēti, izmantojot fluorescences mikroskopu (DP73, Olympus).

Mitohondriju membrānas potenciāla (MMP) mērīšana

MMP tika noteikts, nosakot mitohondriju potenciāla izmaiņas, izmantojot mitohondriju krāsošanas komplektu (CS0390, Sigma-Aldrich) saskaņā ar ražotāja norādījumiem. HS68 šūnas tika iesētas 4-iedobju priekšmetstikliņos 24 stundas pirms apstrādes. Pēc apstrādes šūnas tika mazgātas ar 1x PBS un inkubētas ar JC-1 37 grādu temperatūrā 20 minūtes un pēc tam divas reizes mazgātas ar JC-1krāsošanas buferis. Attēli tika uzņemti, izmantojot fluorescences mikroskopu (Olympus). Sarkanā fluorescence (apkopots JC-1) norādīja uz neskartiem mitohondrijiem, savukārt zaļā fluorescence (monomērs JC-1) norādīja uz mitohondriju darbības traucējumiem.


Aneksīna V un propīdija jodīda (PI) krāsošana ar plūsmas citometriju

Apoptotiskās šūnas tika iekrāsotas ar aneksīnu V un PI un pēc tam noteiktas ar plūsmas citometriju, izmantojot krāsošanu. Īsumā, HS68 šūnas tika apstrādātas ar dažādām H2O2 koncentrācijām (50, 100, 200, 300 un 400 µM) 24 stundas. Pēc tam šūnas tika savāktas ar tripsinizāciju un iekrāsotas, izmantojot aneksīna V un PI apoptozes noteikšanas komplektu (BD Biosciences, Sanhosē, CA, ASV) saskaņā ar ražotāja protokolu. Plūsmas citometrija tika veikta Ķīnas Medicīnas universitātes Taivānas fluorescences aktivēto šūnu šķirošanas (FACS) pamatiekārtā, izmantojot FACS Canto™ sistēmu (BD Biosciences).

Ar novecošanos saistīta -galaktozidāzes (SA- -gal) krāsošana

Lai noteiktu novecojošās šūnas, tika izmantots SA{{0}}gal krāsošanas komplekts (9860, Cell Signaling, Danvers, MA, ASV). Īsumā, HS68 šūnas (20, 000 šūnas/iedobē) tika kultivētas uz priekšmetstikliņiem 24 stundas, fiksētas ar 4% paraformaldehīdu 10 minūtes, mazgātas ar ledusaukstu PBS un pēc tam inkubētas nakti 37 grādu temperatūrā ar X- Gal pie pH 6,0. Pēc mazgāšanas zili iekrāsotās novecošanās šūnas tika fotografētas, izmantojot gaismas mikroskopu (Olympus, Tokija, Japāna).

Dzīvnieku modeļi

Četras nedēļas vecas C57BL/6J kailas peles tika iegūtas no BioLasco Taiwan Co., Ltd, Taipeja, Taivāna. Saskaņā ar Nacionālā laboratorijas dzīvnieku centra (NLAC) protokoliem dzīvnieki tika izmitināti Ķīnas Medicīnas universitātes Dzīvnieku centrā kontrolētos temperatūras apstākļos (22–24 grādi) un 12-h gaismas-tumsas ciklā ar brīvu piekļuvi standarta laboratorijas uzturam. un krāna ūdeni eksperimenta periodā. Peļu muguras ādas apgabali tika apzīmēti ar Indijas tinti, un dzīvnieki tika sadalīti četrās grupās (n=6/grupa): kontrole un nesēja grupa, UVB apstarotā plus nesēja grupa, UVB apstarotā un mazās devas ( 12 mg/kg) grupa, kas apstrādāta ar galanīnu un UVB apstarotā plus lielu devu (24 mg/kg)apstrādāts ar cistanšugrupai. Piešķirtās ādas zonas tika apstarotas ar 150 mJ/cm2 UVB vienā ekspozīcijā un lokāli apstrādātas ar nesēju vai cistanšu trīs reizes nedēļā 8 nedēļas. Pēc peles ķermeņa svēršanassvara, cistanche tika svaigi pagatavota koncentrācijā 12 mg/kg un 24 mg/kg propilēnglikola/etanola/H2O (1:1:8). Šķīdumu (100 uL) lokāli uzklāja uz norādītajām vietām (2 × 2 cm) uz peļu muguras ādas. UVB iedarbībai peles tika ievietotas UV šķērssavienotāja kastē, kas bija aprīkota ar UVB spuldzēm. Pirms peles saņēma UVB apstarošanu, kontrole (apgabals, kas nav pakļauts UVB iedarbībai) tika pārklāts ar anti-UV uzlīmi. Pēc UVB iedarbības uz peļu muguras ādas lokāli tika uzklātas dažādas cistanche vai nesēja devas. Eksperimenta beigās visi dzīvnieki tika nosvērti un nogalināti. Pēc tam viņu muguras āda tika ātri izgriezta, nekavējoties sasaldēta šķidrā slāpeklī un uzglabāta –80 grādu temperatūrā olbaltumvielu un RNS analīzēm; daļa tika fiksēta ar 10 procentu formalīna šķīdumu histoloģiskai krāsošanai.


Histoloģiskā izmeklēšana

Ādas biopsijas paraugi tika fiksēti 10 procentu formalīnā un rehidrēti, izmantojot spirta gradientu (100 procenti, 95 procenti un 75 procenti) vismaz 24 stundas. Pēc tam paraugi tika iestrādāti parafīna vaskā un sadalīti 0, 5 μm biezumā. Iegultās ādas šķēles tika iekrāsotas ar hematoksilīnu un eozīnu (H&E) un Masona trihromu (MT), lai novērtētu attiecīgi ādas struktūru un kolagēna šķiedru saturu. Attēli tika uzņemti, izmantojot gaismas mikroskopu (Olympus).


Imūnhistoķīmija

Iegultie 0,5 μm biezi ādas audu paraugi tika žāvēti 60 grādos nakti pēc 30 minūtes atvaskošanas ksilolā un 30 minūtes rehidratācijas 100 procentu etanolā. Endogēnā peroksidāzes aktivitāte tika bloķēta, inkubējot ūdeņraža peroksīda bloķēšanas buferšķīdumā (3 procenti H2O2) 10 minūtes. Pēc sekciju skalošanas ar krāna ūdeni 15 minūtes, nespecifiskā saistīšanās tika bloķēta, inkubējot ar 2, 5% zirga serumu 10 minūtes. Pēc tam sekcijas tika inkubētas ar primārajām antivielām (atšķaidījums 1:100) nakti 4 grādu temperatūrā. Pēc mazgāšanas ar 1 × PBS paraugus apstrādāja ar sekundārajām antivielām 10 minūtes RT. Pēc tam priekšmetstikliņiem 10 minūtes RT tika pievienots HRP polimērs, kam sekoja DAB substrāta (Roche) uzklāšana 15 sekundes RT. Pēc tam paraugs tika krāsots ar hematoksilīnu 5 minūtes RT. Visbeidzot, audu un polimēru komplekss tika atklāts, izmantojot gaismas mikroskopu (Olympus).

Statistiskā analīze

Visi eksperimenti tika veikti vismaz trīs reizes. Statistiskās analīzes tika veiktas, izmantojot Graph Pad Prism5 statistikas programmatūru (Graph Pad Software Inc., Sandjego, CA, ASV). Atšķirības starp vairāku grupu vidējiem tika novērtētas, izmantojot dispersijas analīzi. Dati tika analizēti ar atsevišķu vienvirziena ANOVA. Atšķirības starp atsevišķiem līdzekļiem bijanosaka ar Tukey vai Dannett testiem. Kvantitatīvie dati tiek parādīti kā vidējais ± SD, kas atbilst trim vai vairākiem atkārtojumiem. P vērtība< 0.05 was considered statistically significant. 


AUTORU IEGULDĪJUMI

Konceptualizācija: WWK, CYH, JJL; Finansējuma iegūšana: JJL; Izmeklēšana: YTN; Metodoloģija: SCN, YTN; Projekta administrācija: YTN; Resursi: WWK, CYH, JJL; Uzraudzība: WWK, JSL; Validācija: CJC; Rakstīšana — oriģinālā uzmetuma sagatavošana: YTN; Rakstīšana — pārskatīšana un rediģēšana: SCN, WWK, VVP. WWK* un CYH* ieguldīja vienlīdzīgu ieguldījumu šajā darbā. INTEREŠU KONFLIKTI

Autori nepaziņo par interešu konfliktiem saistībā ar šo pētījumu.

FINANSĒJUMS Šis pētījums tika atbalstīts ar Zinātnes un tehnoloģiju ministrijas (MOST 109-2320- B-039-038-MY3) un Ķīnas Medicīnas universitātes (CMU110-MF-39) dotācijām.


ATSAUCES

1. Farage MA, Miller KW, Elsner P, Maibach HI. Iekšējie un ārējie faktoriādas novecošanās: recenzija. Int J Cosmet Sci. 2008. gads; 30:87–95. https://doi.org/10.1111/j.1468-2494.2007.00415.x PMID:18377617 2. Mauviel A. Augšanas faktora-beta signālu pārveidošana ādā: stromas un epitēlija šķērsruna. J Invest Dermatol. 2009. gads; 129:7–9. https://doi.org/10.1038/jid.2008.385 PMID:19078982

3. Naylor EC, Watson RE, Sherratt MJ. Molekulārie aspektiādas novecošanās. Maturitas. 2011. gads; 69:249–56. https://doi.org/10.1016/j.maritas.2011.04.011 PMID:21612880

4. Kähäri VM, Saarialho-Kere U. Matrix metalloproteinase in skin. Exp Dermatol. 1997. gads; 6:199–213. https://doi.org/10.1111/j.{8}}.1997.tb00164.x PMID:9450622

5. Kim HH, Lee MJ, Lee SR, Kim KH, Cho KH, Eun HC, Chung JH. UV izraisītas ādas grumbu palielināšanās ar infrasarkano starojumu pelēm bez matiem. Meh Aging Dev. 2005. gads; 126:1170–77. https://doi.org/10.1016/j.mad.2005.06.003 PMID:16118013

6. Baumann L. Ādas novecošana un tās ārstēšana. J Pathols. 2007. gads; 211:241–51. https://doi.org/10.1002/path.2098 PMID:17200942

7. Massagué J. TGF signalizācija kontekstā. Nat Rev Mol Cell Biol. 2012. gads; 13:616–30. https://doi.org/10.1038/nrm3434 PMID:22992590

8. Murphy AM, Wong AL, Bezuhly M. Angiotenzīna II signālu modulācija fibrozes profilaksē. Fibroģenēzes audu remonts. 2015. gads; 8:7. https://doi.org/10.1186/s13069-015-0023-z PMID:25949522

9. Tu Y, Quan T. Oksidatīvais stress un cilvēka ādas saistaudu novecošanās. Kosmētika. 2016. gads; 3:28. https://doi.org/10.3390/cosmetics3030028 10. Chung JH, Youn SH, Kwon OS, Eun HC, Kim KH, Park KC, Cho KH, Youn JI. Uzlabota cilvēka dermas fibroblastu proliferācija un kolagēna sintēze hroniski fotobojātā ādā. Photodermatolwww.aging-us.com 25361 AGEING Photoimmunol Photomed. 1996. gads; 12:84–89. https://doi.org/10.1111/j.{15}}.1996.tb00180.x PMID:8897594


Jautājiet vairāk:

E-pasts:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: plus 86 15292862950

Jums varētu patikt arī