5.2. Ēterisko eļļu analīze

Ēterisko eļļu izolēšana ar hidrodestilāciju tika veikta Clevenger tipa aparātā 3 stundas [64].

Cistanche glikozīds var arī palielināt SOD aktivitāti sirds un aknu audos un būtiski samazināt lipofuscīna un MDA saturu katrā audā, efektīvi attīrot dažādus reaktīvos skābekļa radikāļus (OH-, H2O₂ utt.) un aizsargājot no izraisītiem DNS bojājumiem. ar OH-radikāļiem. Cistanche feniletanoīda glikozīdiem ir spēcīga brīvo radikāļu attīrīšanas spēja, augstāka reducējošā spēja nekā C vitamīnam, tie uzlabo SOD aktivitāti spermas suspensijā, samazina MDA saturu un zināmā mērā aizsargā spermas membrānas darbību. Cistanche polisaharīdi var uzlabot SOD un GSH-Px aktivitāti eksperimentāli novecojošu D-galaktozes izraisītu peļu eritrocītos un plaušu audos, kā arī samazināt MDA un kolagēna saturu plaušās un plazmā, kā arī palielināt elastīna saturu. laba attīrošā iedarbība uz DPPH, pagarina hipoksijas laiku novecojošām pelēm, uzlabo SOD aktivitāti serumā un aizkavē plaušu fizioloģisko deģenerāciju eksperimentāli novecojošām pelēm Ar šūnu morfoloģisko deģenerāciju eksperimenti ir parādījuši, ka Cistanche ir labas antioksidanta spējas un tas var būt zāles ādas novecošanās slimību profilaksei un ārstēšanai. Tajā pašā laikā ehinakozīdam Cistančā ir ievērojama spēja attīrīt DPPH brīvos radikāļus un novērst reaktīvās skābekļa sugas, novērst brīvo radikāļu izraisītu kolagēna noārdīšanos, un tam ir arī laba timīna brīvo radikāļu anjonu bojājumu labošanas ietekme.

Noklikšķiniet uz Cistanche Tubulosa papildinājums

【Lai iegūtu plašāku informāciju: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Eļļu analīzes tika veiktas gan ar gāzu hromatogrāfiju (GC), gan ar gāzu hromatogrāfiju/masas spektrometriju (GC/MS). GC analīzes tika veiktas, izmantojot gāzu hromatogrāfu (Agilent 7890A, Palo Alto, CA, ASV), kas aprīkots ar 30 m × 0,25 mm id ar 0,25 µm stacionāru. plēves biezums HP-5 kapilārā kolonna (Agilent J&W, Santa Clara, CA, ASV). Tika izmantota šāda temperatūras programma: no 60 ◦C līdz 246 ◦C ar ātrumu 3 ◦C min−1 un pēc tam turēja 246 ◦C 20 minūtes (kopējais analīzes laiks 82 min). Citi darbības apstākļi bija šādi: nesējgāze hēlijs (tīrība ir lielāka vai vienāda ar 99,9999 procentiem — Air Liquide, Milāna, Itālija); plūsmas ātrums, 1,0 mL.min-1; inžektora temperatūra, 250 ◦C; detektora temperatūra, 300 ◦C. 1 µL atšķaidīta parauga (1:100 n-heksānā, w/w) injicēšana tika veikta ar sadalīšanas attiecību 1:20, izmantojot automātisko paraugu ņemšanas ierīci (Agilent, Model 7683B, Santa Clara, CA, USA).

GC-MS analīzes tika veiktas, izmantojot gāzu hromatogrāfu (Agilent 6890N, Santa Clara, CA, USA), kas aprīkots ar 30 m × 0,25 mm id ar 0,25 µm stacionāru plēves biezumu HP{ {7}} ms kapilārā kolonna (Agilent J&W, Santa Clara, CA, ASV), kas savienota ar masas selektīvo detektoru ar elektronu jonizācijas ierīci, EI, un kvadrupola analizatoru (Agilent 5973, Santa Clara, CA, ASV). Temperatūras programma un hromatogrāfijas darbības apstākļi (izņemot detektoru) bija tādi paši kā GC-FID. MS apstākļi bija šādi: MS pārvades līnijas temperatūra 240 ◦C; EI jonu avota temperatūra, 200 ◦C ar jonizācijas enerģiju 70 eV; kvadrupola temperatūra 150 ◦C; skenēšanas ātrums, 3,2 skenēšana.s−1 m/z skenēšanas diapazonā, (30 līdz 480). Lai apstrādātu un apstrādātu hromatogrammas un masas spektrus, tika izmantota programmatūra MSD ChemStation (Agilent, rev. E.01.00.237, Santa Clara, CA, ASV). Savienojumi tika identificēti, salīdzinot to masas spektrus ar NIST02 bibliotēkas datiem GC/MS sistēmā un Adams bibliotēkās [32,33]. Rezultāti tika vēl vairāk apstiprināti, salīdzinot ar savienojuma eluēšanas secību ar to aiztures indeksiem puspolārajās fāzēs, par kurām ziņots literatūrā [32]. Komponentu aiztures indeksi tika noteikti attiecībā pret n-alkānu sērijas (divu standarta maisījumu C8–C20 un C21–C40) aiztures laikiem ar lineāro interpolāciju [65]. Atsevišķo komponentu procentuālais daudzums tika aprēķināts, pamatojoties uz GC pīķu laukumiem bez FID atbildes koeficienta korekcijas. Rezultāti tiek parādīti kā atsevišķu pīķu procentuālā daļa ± standarta novirze no diviem neatkarīgiem hromatogrāfijas braucieniem.

5.3. Pretsēnīšu darbība

Tika novērtēta S. cacaliifolia ēteriskās eļļas pretsēnīšu aktivitāte pret pavedienu sēnēm un raugiem. Trīs dermatofītu klīniskie celmi, kas izolēti no nagiem un ādas (Epidermophyton floccosum FF9, Trichophyton mentagrophytes FF7 un Microsporum canis FF1), un četri dermatofītu tipa celmi no Colección Espanõla de Cultivos Tipo (T. mentagrophytes ECT var. 9 interdigital. 2794, T. verrucosum CECT 2992 un M. gypseum CECT 2908), viens Cryptococcus neoformans tipa celms (C. neoformans YPO186), divi klīniski Candida celmi, kas izolēti no atkārtotiem vulvovaginālas slimības gadījumiem (C.ller, krusei LFgu33) un C. krusei LFgu33. trīs Candida tipa celmi (C. albicans ATCC 10231, C. tropicalis YPO128 un C. paraphimosis ATCC 90018). Lai nodrošinātu optimālus augšanas apstākļus un tīrību, visi celmi tika uzglabāti Sabouraud dekstrozes buljonā ar 20% glicerīna pie -80 ◦C un subkultūrēti Sabouraud dekstrozes agarā (SDA) vai kartupeļu dekstrozes agarā (PDA).

Lai noteiktu eļļas minimālo inhibējošo koncentrāciju (MIC) un minimālo letālo koncentrāciju (MLC), tika izmantota mikroatšķaidīšanas buljona metode saskaņā ar Klīnisko un laboratorijas standartu institūta (CLSI) atsauces protokolu M38-A2 [66] vai M27-A3 [67] pavedienu sēnēm un raugiem, attiecīgi. MIC bija zemākā koncentrācija, kurā netika novērota augšana inokulētajās mēģenēs, savukārt MLC bija zemākā koncentrācija, kurā pēc inokulācijas SDA no visām negatīvajām mēģenēm netika novērota augšana. Tika iekļauta arī negatīva (neinokulēta barotne) un pozitīva (inokulēta barotne ar 1 procentu DMSO) kontrole.

5.4. Pretiekaisuma darbība

RAW 264.7, peles leikēmijas makrofāgu šūnu līnija, kas iegūta no American Type Culture Collection (ATCC TIB-71), tika kultivēta, kā iepriekš ziņoja mūsu grupa [22].

NO ražošana tika mērīta, kvantitatīvi nosakot nitrītu uzkrāšanos kultūras supernatantos, izmantojot Griess reaģentu [68]. Šūnas (0,6 × 106 šūnas/iedobē) kultivēja 48-iedobju kultūras plāksnēs. Pēc stabilizācijas uz nakti makrofāgi tika iepriekš apstrādāti 1 stundu ar ēterisko eļļu (0.08–1,25 µL/mL), kas atšķaidīta ar DMSO un pēc tam tika aktivizēta ar 50 ng/mL LPS. 24 h. Tika veiktas pozitīvas (LPS stimulētas makrofāgi) un negatīvas kontroles (neapstrādātas makrofāgi). Pēc šī inkubācijas perioda vienādos daudzumos kultūras supernatantu un Griesa reaģenta [1:1 0,1% (w/v) N-(1-naftil)etilēndiamīna dihidrohlorīda un 1% (w/v) sulfanilamīda, kas satur 5% w/v) H3PO4] tika sajaukti un inkubēti 30 minūtes tumsā. Absorbcija pie 550 nm tika reģistrēta automatizētā plākšņu lasītājā (Agilent, Santa Clara, CA, ASV), un nitrītu koncentrācija tika noteikta no nātrija nitrīta standarta līknes. Mūsu grupa jau pierādīja, ka DMSO maksimālajā izmantotajā koncentrācijā (0, 4 procenti) nav pretiekaisuma un citotoksicitātes (dati nav parādīti).

RAW 264.7 (1,2 × 106 šūnas/iedobē) kultivēja 6-iedobju plāksnēs un ļāva stabilizēties 12 stundas. Pēc tam šūnas 1 stundu inkubēja ar ēterisko eļļu (0, 64 µL / ml), kam sekoja LPS (50 ng / ml) aktivācija 24 stundas. Tika apsvērta negatīvā kontrole (neapstrādātas šūnas) un pozitīvā kontrole (tikai ar LPS apstrādātas šūnas). Šūnu lizāti tika sagatavoti, kā iepriekš aprakstīja Zuzarte et al. [22].

Tika veikta Western blot analīze, lai noteiktu inducējamās slāpekļa oksīda sintāzes (iNOS) un ciklooksigenāzes {{0}} (COX-2) proteīnu līmeni. Olbaltumvielas tika atdalītas ar elektroforēzi uz SDS-poliakrilamīda 10 procentiem (v/v), pie 130 V 1,5 stundas, un pārnestas uz polivinilidēna fluorīda membrānām (iepriekš aktivizētas ar metanolu) pie 400 mA 3 stundas. Pēc nespecifisko IgG bloķēšanas ar 5 procentiem (w/v) pienu TBS-T 1 stundu istabas temperatūrā, membrānas inkubēja ar specifiskām antivielām pret iNOS (1:500; R&D Systems) vai COX{15} } (1:5000; Abcam, Kembridža, Apvienotā Karaliste) naktī, 4 ◦C. Pēc tam membrānas 30 minūtes mazgā ar TBS-T (10 min, 3 reizes) un inkubēja istabas temperatūrā 1 stundu ar sekundārajām antivielām (1:40, 000); Santa Cruz Biotechnology, Dalasa, Teksasa , ASV), konjugēts ar mārrutku peroksidāzi. Imūnkompleksi tika atklāti, izmantojot hemiluminiscences skeneri (Image Quant LAS 500, GE, Boston, MA, ASV). Membrānas tika pārbaudītas ar anti-tubulīna antivielu (1:20 000; Sigma), lai garantētu, ka tiek ielādēts līdzvērtīgs proteīna daudzums. Olbaltumvielu kvantitatīva noteikšana tika veikta, izmantojot ImageLab versiju 6.1.0 (Bio-Rad Laboratories Inc., Hercules, CA, ASV).

5.5. Šūnu migrācija

NIH 3T3, peles embrija fibroblastu šūnu līnija (ATCC CRL-1658), tika kultivēta, kā iepriekš aprakstīts mūsu grupā [69].

5.5.2. Šūnu migrācijas tests

Šūnu migrācija tika veikta, izmantojot skrāpējumu brūces testu, kā ziņoja Martinotti un kolēģi [70] ar nelielām izmaiņām. Īsumā, NIH 3T3 fibroblasti tika iesēti ar 2,5 × 105 šūnām/ml 12-iedobju plāksnēs. Pēc 24 stundu augšanas šūnu monoslānī tika veikta skrāpēšana, izmantojot 20–200 µL pipetes galu. Atdalītās šūnas tika noņemtas, mazgājot šūnas ar sterilu PBS 1x. Visām plāksnēm tika pievienots DMEM ar 2 procentu serumu ēteriskās eļļas klātbūtnē vai bez tās. Izmantojot fāzes kontrakta mikroskopu, attēli tika iegūti 0, 12 un 18 stundas pēc skrāpējuma, un brūces laukums tika izmērīts, izmantojot ImageJ / Fiji programmatūru. Iesniegtie rezultāti tika iegūti, izmantojot šādu vienādojumu

5.6. Šūnu dzīvotspēja

Dažādu ēteriskās eļļas koncentrāciju ietekme uz makrofāgu un fibroblastu dzīvotspēju tika veikta, izmantojot resazurīna samazināšanas testu. Īsumā, makrofāgi ({{0}},6 × 106 šūnas/ml) vai fibroblasti (1,25 × 105 šūnas/ml) tika iesēti 48-iedobju plāksnēs. Pēc stabilizācijas uz nakti 24 stundas tika pievienotas dažādas ēteriskās eļļas koncentrācijas (0, 08–1, 25 µL / ml), kas atšķaidīta ar DMSO. Eksperimenta beigās barotne tika noņemta un attiecīgi makrofāgiem un fibroblastiem uz 1 stundu vai 4 stundām tika pievienota svaiga barotne, kas satur resazurīnu (1:10). Absorbcija pie 570 nm ar atsauces filtru 620 nm tika reģistrēta automatizētā plākšņu lasītājā (Agilent, Santa Clara, CA, ASV). Šūnu dzīvotspēja tika noteikta, izmantojot šādu vienādojumu:

kur AbsExp ir absorbcija (starpība starp 570 un 620 nm) dažādos eksperimenta apstākļos un AbsCT ir absorbcija kontroles šūnās (bez ēteriskās eļļas).

5.7. Etopozīdu izraisīta novecošanās 

Novecošanās tika novērtēta, izmantojot komerciāli pieejamu beta-galaktozidāzes krāsošanas komplektu saskaņā ar ražotāja protokolu (Cell Signaling Technology). Īsumā, 2,5 × 104 fibroblasti tika iesēti 12-iedobju plāksnēs un ļāva tiem pielipt nakti. Pēc tam novecošana tika ierosināta, 24 stundas inkubējot šūnas ar 12, 5 µM etopozīda. Etopozīds tika noņemts, un šūnas tika mazgātas ar PBS 1x. Pēc tam šūnām ļāva atgūties 72 stundas DMEM bez S. cacaliifolia ēteriskās eļļas vai tās klātbūtnē, un katru dienu tika novērtētas morfoloģijas izmaiņas. Pēc 72 stundām šūnas tika fiksētas 15 minūtes, izmantojot 1x fiksācijas šķīdumu (nodrošināts komerciālajā komplektā), kam sekoja PBS mazgāšana, un nakti inkubēja ar beta-galaktozidāzes krāsošanas šķīdumu sausā inkubatorā 37 ◦ C temperatūrā bez CO2 padeves. Dažādi lauki tika apskatīti mikroskopā zilās krāsas attīstībai un tika fotografēti attēla analīzei (8 attēli katrā stāvoklī). Izteikta zilā krāsa liecināja par beta-galaktozidāzes aktivitāti. Kvantitatīvā analīze tika veikta, izmantojot ImageJ, un tika aprēķināts novecojošo šūnu procentuālais daudzums no kopējām šūnām.

5.8. Statistiskā analīze

Rezultāti ir parādīti kā vidējās vērtības ± SEM (vidējā standarta kļūda) no vismaz trim neatkarīgiem eksperimentiem, kas veikti divos eksemplāros. Statistiskā nozīme pretiekaisuma, šūnu dzīvotspējas un novecošanās testos tika noteikta, izmantojot vienvirziena dispersijas analīzi (ANOVA), kam sekoja Daneta post-hoc tests, izmantojot GraphPad Prism versiju 9.3.0 (GraphPad Software, Sandjego, CA, ASV). Šūnu migrācijas testiem statistisko nozīmīgumu noteica ar divvirzienu ANOVA, kam sekoja Sydák daudzkārtējais salīdzināšanas tests. Tika uzskatīts, ka p-vērtība < 0,05 atspoguļo būtiskas atšķirības.

Autora ieguldījums:Konceptualizācija, LS un AM; validācija, AS, MJG, MTC un SP; formālā analīze, JMA-S., MJG, AP un DF; izmeklēšana, JMA-S., AM un AP; resursi, AM, EC, MTC un LS; datu pārvaldīšana, AP; rakstīšana — oriģinālā projekta sagatavošana, JMA-S., AP un AM; rakstīšana — pārskatīšana un rediģēšana, MTC, LS un AM; vizualizācija, JMA-S.; uzraudzība, LS un AM; projektu administrācija, LS; finansējuma iegūšana, LS un MTC Visi autori ir izlasījuši un piekrituši publicētajai manuskripta versijai.

Finansējums:Šo darbu finansēja COMPETE 2020 — darbības programma konkurētspējai un internacionalizācijai un Portugāles nacionālie fondi, izmantojot FCT — Fundação para a Ciência ea Tecnologia, saskaņā ar projektiem UIDB/04539/2020, UIDP/04539/2020 un LA/P/02058.

Paziņojums par datu pieejamību:Dati būs pieejami pēc pieprasījuma.

Interešu konflikti:Autori paziņo, ka nav interešu konflikta.

Atsauces

1. Bongomins, F.; Gago, S.; Oladele, R.; Dennings, D. Sēnīšu slimību globālā un daudznacionālā izplatība — aplēšu precizitāte. J. Fungi 2017, 3, 57. [CrossRef] [PubMed]

2. Kampojs, S.; Adrio, JL Pretsēnīšu līdzekļi. Biochem. Pharm. 2017, 133., 86–96. [CrossRef] [PubMed]

3. Gupta, AK; Cooper, EA atjauninājums dermatofitozes pretsēnīšu terapijā. Mycopathologia 2008, 166, 353–367. [CrossRef]

4. Matizs, C.; Friedlander, SF Zemādas audu infekcijas un abscesi. Bērnu infekcijas slimību principos un praksē; Elsevier: Amsterdama, Nīderlande, 2012; 454.–462.lpp.e3.

5. de Oliveira, CB; Vaskončeloss, C.; Sakai-Valente, NY; Sotto, MN; Luizs, FG; Belda Jūniora, V.; de Sousa, MdGT; Benards, G.; Criado, PR Toll-like Receptors (TLR) 2 un 4 Keratinocītu ekspresija no pacientiem ar lokalizētu un izplatītu dermatofitozi. Rev. Inst. Med. Trop. Sanpaulu, 2015, 57, 57–61. [CrossRef] [PubMed]

6. Celestrīno, GA; Reiss, APC; Criado, PR; Benards, G.; Sousa, MGT Trichophyton Rubrum izraisa fagocītiskas un pro-iekaisuma reakcijas cilvēka monocītos, izmantojot nodevu līdzīgu receptoru 2. Priekšpuse. Microbiol. 2019, 10, 2589. [CrossRef]

7. Sun, S.-C. Nekanoniskais NF-B ceļš imunitātes un iekaisuma gadījumā. Nat. Immunol. 2017, 17, 545–558. [CrossRef] [PubMed]

8. Šarma, A.; Gupta, S. Herbonanoceuticals kā pretsēnīšu līdzekļu aizsargājoša izpausme: iespējamais zāļu kandidāts dermatofītiskajai infekcijai. Veselība Sci. Rep. 2022, 5. [CrossRef]

9. Guo, S.; DiPjetro, LA Faktori, kas ietekmē brūču dzīšanu. J. Dents. Res. 2010, 89., 219.–229. [CrossRef]

10. Zuzarte, M.; Gonsalves, MJ; Kavaleiro, K.; Kanoto, Dž.; Valē-Silva, L.; Silva, MJ; Pinto, E.; Salgueiro, L. Lavandula Viridis LHér ēterisko eļļu ķīmiskais sastāvs un pretsēnīšu iedarbība. J. Med. Microbiol. 2011, 60, 612–618. [CrossRef]

11. Martiness-Rosi, NM; Bitenkūra, TA; Peress, NTA; Lang, EAS; Gomes, EV; Quaresemin, NR; Mārtiņš, deputāts; Lopes, L.; Rossi, A. Dermatofītu rezistence pret pretsēnīšu zālēm: mehānismi un prospekts. Priekšpuse. Microbiol. 2018, 9, 1108. [CrossRef]

12. Mourad, A.; Perfect, JR Karš pret kriptokokozi: Pretsēnīšu arsenāla pārskats. Atm. Inst. Osvalds. Krūzs. 2018, 113, e170391. [CrossRef] [PubMed]

13. Makartijs, MW; Kontoyiannis, DP; Kornelija, OA; Perfekti, JR; Walsh, TJ Novel Agents un narkotiku mērķi, lai risinātu rezistentu sēņu problēmas. J. Inficēt. Dis. 2017, 216, S474–S483. [CrossRef] [PubMed]

14. Vonkemans, HE; van de Lārs, MAFJ nesteroīdie pretiekaisuma līdzekļi: nelabvēlīgā ietekme un to novēršana. Semin. Artrīts. Rheum. 2010, 39, 294–312. [CrossRef] [PubMed]

15. Bakkali, F.; Averbeks, S.; Averbeks, D.; Idaomar, M. Ēterisko eļļu bioloģiskā ietekme. Pārskats. Food Chem. Toksikols. 2008, 46, 446–475. [CrossRef] [PubMed]

16. Kristaki, E.; Bonoss, E.; Džanenass, I.; Florou-Paneri, P. Aromātiskie augi kā bioaktīvo savienojumu avots. Lauksaimniecība 2012, 2, 228–243. [CrossRef]

17. Edris, AE Ēterisko eļļu un to gaistošo sastāvdaļu farmaceitiskie un terapeitiskie potenciāli: pārskats. Fitotēra. Res. 2007, 21, 308–323. [CrossRef] [PubMed]

18. Pinto, E.; Valē-Silva, L.; Kavaleiro, K.; Salgueiro, L. krustnagliņu ēteriskās eļļas no Syzygium Aromaticum pretsēnīšu iedarbība uz Candida, Aspergillus un dermatofītu sugām. J. Med. Microbiol. 2009, 58, 1454–1462. [CrossRef]

19. Pinto, E.; Hrimpengs, K.; Lopes, G.; Vaza, S.; Gonsalves, MJ; Kavaleiro, K.; Salgueiro, L. Ferulago Capillaris ēteriskās eļļas pretsēnīšu aktivitāte pret Candida, Cryptococcus, Aspergillus un dermatofītu sugām. Eiro. Dž.Klins. Microbiol. Inficēt. Dis. 2013, 32, 1311–1320. [CrossRef]

20. Pinto, E.; Pina-Vaz, C.; Salgeiro, L.; Gonsalves, MJ; KostadeOliveira, S.; Kavaleiro, K.; Palmeira, A.; Ro-drigues, A.; Martinezde-Oliveira, J. Thymus Pulegioides ēteriskās eļļas pretsēnīšu aktivitāte uz Can-dida, Aspergillus un dermatofītu sugām. J. Med. Microbiol. 2006, 55, 1367–1373. [CrossRef]

21. Valente, J.; Zuzarte, M.; Gonsalves, MJ; Lopes, MC; Kavaleiro, K.; Salgeiro, L.; Cruz, MT Oenanthe Crocata L. ēteriskās eļļas pretsēnīšu, antioksidantu un pretiekaisuma darbības. Food Chem. Toksikols. 2013, 62, 349–354. [CrossRef] [PubMed]

22. Zuzarte, M.; Alvess-Silva, JM; Alvess, M.; Kavaleiro, K.; Salgeiro, L.; Cruz, MT Jauni ieskati par Thymus Carnosus un Thymus Camphoratus ēterisko eļļu un to galveno savienojumu pretiekaisuma potenciālu un drošības profilu. J. Ethnopharmacol. 2018, 225, 10.–17. [CrossRef]

23. Vokers, Dž. B.; Sytsma, KJ; Treutleins, J.; Wink, M. Salvija (Lamiaceae) nav monofiliska: ietekme uz Salvia un Tribe Mentheae sistemātiku, starojumu un ekoloģisko specializāciju. Am. Dž. Bots. 2004, 91, 1115–1125. [CrossRef] [PubMed]

24. Su, C.-Y.; Ming, Q.-L.; Rahmans, K.; Han, T.; Cjiņa, L.-P. Salvia Miltiorrhiza: tradicionālās medicīnas izmantošana, ķīmija un farmakoloģija. Zods. J. Nat. Med. 2015, 13, 163–182. [CrossRef] [PubMed]

25. Gorbani, A.; Esmaeilizadeh, M. Salvia officinalis un tās sastāvdaļu farmakoloģiskās īpašības. J. Tradīts. Papildināt. Med. 2017, 7, 433.–440. [CrossRef]

26. Afonso, AF; Alvess-Silva, JM; Pereira, OR; Cardoso, SM Salvia augu labvēlīgā ietekme: korelācija ar bioaktīviem komponentiem. In Recent Progress in Medicinal Plants 44. sējums: Fitoterapija III; Govil, JN, Pathak, M., Eds.; Studium Press: Ņūdeli, Indija, 2016; 161.–198.lpp.

27. Salimikia, I.; Ārjanpūrs, M.; Abdollahi, M.; Abdolgafari, A.; Samadi, N.; Monsef-Esfahani, H. Salvia Multicaulis Vahl metanola ekstrakta fitoķīmiski un brūču dziedināšanas efekti. in Žurka. Planta Med. 2016, 81, S1–S381. [CrossRef]

28. Gali-Muhtasib, H.; Hilans, C.; Khater, C. Salvia Libanotica (austrumu Vidusjūras salvijas) tradicionālie lietojumi un tās ēterisko eļļu ietekme. J. Ethnopharmacol. 2000, 71, 513–520. [CrossRef] [PubMed]

29. Hamidpūrs, M.; Hamidpūrs, R.; Hamidpūrs, S.; Shahlari, M. Ķīmija, farmakoloģija un salvijas (salvijas) ārstnieciskās īpašības, lai novērstu un izārstētu slimības, piemēram, aptaukošanos, diabētu, depresiju, demenci, sarkano vilkēdi, autismu, sirds slimības un vēzi. J. Tradīts. Papildināt. Med. 2014, 4, 82–88. [CrossRef]

30. Askari, SF; Avans, R.; Tayarani-Najaran, Z.; Sahebkars, A.; Eghbali, S. Irānas Salvijas sugas: Fitoķīmiskais un farmakoloģiskais atjauninājums. Phytochemistry 2021, 183, 112619. [CrossRef]

31. Davidse, G.; Sousa Sančess, M.; Knaps, SD; Chian Cabrera, F. Rubiaceae un Verbenaceae. 4(2): I–Xvi, 1–533. In Flora Mesoamericana; Davidse, G., Sousa Sánchez, M., Knapp, SD, Chian Cabrera, F., Eds.; Misūri Botāniskais dārzs: Sentluisa, MO, ASV, 2012; 402.–403.lpp.

32. Adams, RP Ēteriskās eļļas komponentu identifikācija ar gāzes hromatogrāfiju/kvadrupola masas spektroskopiju, 4. izdevums; Allured Publishing Corporation: Carol Stream, IL, ASV, 2007.

33. NIST/EPA/NIH Mass Spectral Library 2005. gads.

34. Guijarro-Muñoz, I.; Compte, M.; Alvarez-Cienfuegos, A.; Alvaresa-Vallina, L.; Sanz, L. Lipopolisaharīds aktivizē nodevām līdzīgu receptoru 4 (TLR4)-mediēto NF-KB signalizācijas ceļu un proinflammatorisko reakciju cilvēka pericītos. J. Biol. Chem. 2014, 289, 2457–2468. [CrossRef]

35. Skrima, M.; Melito, C.; Merola, F.; Iorio, A.; Vīto, N.; Džori, AM; Ferravante, A. Salvia Haenkei hidroalkoholiskā gaisa daļu ekstrakta brūču dziedināšanas aktivitātes novērtējums eksperimentālajos modeļos in vitro un in vivo. Clin. Kosmētika. Izpētīt. Derm. 2020, 13, 627–637. [CrossRef] [PubMed]

36. Farahpour, MR; Pirkhezrs, E.; Ašrafians, A.; Sonboli, A. Paātrināta dziedināšana ar Salvia Officinalis ēteriskās eļļas lokālu ievadīšanu Pseudomonas Aeruginosa un Staphylococcus Aureus inficētās brūces modelī. Biomed. Pharmacother. 2020, 128, 110120. [CrossRef]

37. Matičs, I.; Revandkars, A.; Čens, Dž.; Bisio, A.; Dall'Acqua, S.; Kočeta, V.; Brūns, P.; Mančīno, G.; Milanese, M.; Matejs, M.; un citi. Salvia Haenkei kā Gerosupresanta identificēšana, izmantojot integrētu Senes-science-skrīninga testu. Novecošana 2016, 8, 3223–3240. [CrossRef]

38. Park, CH; Shin, SH; Lī, EK; Kims, DH; Kims, M.-J.; Roh, S.-S.; Jokozava, T.; Chung, HY magnija litospermāts B no Salvia Miltiorrhiza BUNGE uzlabo novecošanās izraisītu nieru iekaisumu un novecošanos, izmantojot NADPH oksidāzes mediētu reaktīvo skābekļa veidošanos. Fitotēra. Res. 2017, 31, 721–728. [CrossRef]

39. Najars, B.; Mekači, G.; Nardi, V.; Cervelli, C.; Nardoni, S.; Mančanti, F.; Ebani, VV; Džannekīni, S.; Pistelli, L. Dienvidāfrikas Salvia spp. gaistošas ​​vielas un pretsēnīšu-antibakteriālā-pretvīrusu aktivitāte. Ēteriskās eļļas, kas kultivētas vienādos apstākļos. Molecules 2021, 26, 2826. [CrossRef] [PubMed]

40. Abū-Dārviša, MS; Kabrāls, C.; Ali, Z.; Vangs, M.; Khan, SI; Jēkabs, MR; Jain, SK; Tekvani, BL; Zulfikārs, F.; Khan, IA; un citi. Salvia Ceratophylla L. no Jordānijas dienvidiem: jaunas atziņas par ķīmisko sastāvu un bioloģiskajām aktivitātēm. Nat. Prod. Bioprospekts. 2020, 10, 307–316. [CrossRef] [PubMed]

41. Taarit, MB; Msāda, K.; Hosni, K.; Čaheds, T.; Marzouk, B. Tunisijā savvaļā augošās Salvia Verbenaca ēterisko eļļu sastāvs. J. Food Biochem. 2010, 34, 142–151. [CrossRef]

42. Viljoen, AM; Gono-Bvalija, A.; Kamatou, GPP; Ba¸ser, KHC; Demirci, B. Salvia Stenophylla un tās sabiedroto S. Repens un S. Runcinata ēterisko eļļu sastāvs un ķīmijtaksonomija. J. Esents. Oil Res. 2006, 18, 37–45. [CrossRef]

43. Pinto, E.; Salgeiro, LR; Kavaleiro, K.; Palmeira, A.; Gonçalves, MJ Dažu rauga un pavedienveida sēņu sugu in vitro jutība pret Salvia Officinalis ēteriskajām eļļām. Ind. Crop. Prod. 2007, 26, 135–141. [CrossRef]

44. Tosuns, A.; Kāns, S.; Kims, Y.; Kalins-Sančess, A.; Hysenajs, X.; Carbonell-Barrachina, A. Salvia Officinalis L (Lamiaceae) ēterisko eļļu sastāvs un pretiekaisuma darbība Murin makrofāgos. Trop. J. Pharm. Res. 2014, 13, 937. [CrossRef]

45. Abū-Dārviša, MS; Kabrāls, C.; Ferreira, IV; Gonsalves, MJ; Kavaleiro, K.; Krūza, MT; Al-bdour, TH; Sal-gueiro, L. Parastās salvijas (Salvia Officinalis L.) ēteriskā eļļa no Jordānijas: Mamma-lian šūnu drošības novērtējums un tās pretsēnīšu un pretiekaisuma potenciāls. Biomed. Res. Int. 2013, 2013, 1.–9. [CrossRef]

46. ​​Leporini, M.; Bonesi, M.; Loico, MR; Passalacqua, NG; Tundis, R. Salvijas Rosmarinus Spenn ēteriskā eļļa. no Itālijas kā veselību veicinošu savienojumu avots: ķīmiskais profils un antioksidantu un holīnesterāzes inhibējošā aktivitāte. Plants 2020, 9, 798. [CrossRef]

47. Čojs, JK; Ak, H.-M.; Lī, S.; Kvons, TK; Šīns, T.-Y.; Rho, M.-C.; Kims, S.-H. Salvia Plebeia nomāc atopiskajam dermatītam līdzīgus ādas bojājumus. Am. J. Čins. Med. 2014, 42, 967–985. [CrossRef]

48. Faheds, L.; Stiens, D.; Ouaini, N.; Eparvier, V.; el Beyrouthy, M. Salvia multicaulis Vahl ēterisko eļļu ķīmiskā daudzveidība un pretmikrobu aktivitāte. Chem. Biodivers. 2016, 13, 591–595. [CrossRef]

49. Juliano, C.; Marketi, M.; Kampaņa, P.; Usai, M. Helichrysum Microphyllum Cambess ēteriskās eļļas pretmikrobu aktivitāte un ķīmiskais sastāvs. Subsp. Tyrrhenicum Bacch., Brullo & Giusso Ievāc Sardīnijas dienvidrietumos. Saūda Arābija. J. Biol. Sci. 2019, 26, 897–905. [CrossRef] [PubMed]

50. Viņš, X.; Džans, L.; Čens, Dž.; Sui, J.; Yi, G.; Vū, Dž.; Ma, Y. Korelācija starp Clausena Lansium ēteriskās eļļas ķīmisko sastāvu un pretsēnīšu aktivitāti pret Candida spp. Molecules 2019, 24, 1394. [CrossRef]

51. Ruiss-Vāskess, L.; Ruiss Mesija, L.; Caballero Ceferino, HD; Ruiss Mesija, V.; Andrē, MF; Diaza, CE; Gonza-lez-Coloma, A. Piper ēterisko eļļu pretsēnīšu un herbicīdu potenciāls no Peru Amazonijas. Plants 2022, 11, 1793. [CrossRef] [PubMed]

52. Fontenelle, ROS; Morais, SM; Brito, EHS; Brilhante, RSN; Kordeiro, RA; Nascimento, NRF; Kerntopfs, MR; Sidrim, JJC; Rocha, MFG Krotonu sugu ēterisko eļļu pretsēnīšu darbība no Brazīlijas Caatinga Biome. J. Appl. Microbiol. 2008, 104, 1383–1390. [CrossRef] [PubMed]

53. Mathela, C.; Joshi, S. Lapu ēteriskās eļļas un tās sastāvdaļu furanodienona un kurzerenona antioksidanta un antibakteriālā darbība no Lindera Pulcherrima (Nees.) Benth. Bijušais Āķis. f. Farmakognozija. Res. 2012, 4, 80. [CrossRef]

54. Serra, E.; Hidalgo-Bastida, L.; Verrans, Dž.; Viljamss, D.; Malic, S. Komerciālo ēterisko eļļu un biocīdu pretsēnīšu darbība pret Candida Albicans. Pathogens 2018, 7, 15. [CrossRef]

55. Buršteins, VL; Beccacece, I.; Guaskoni, L.; Mena, CJ; Cervi, L.; Chiapello, LS Ādas imunitāte pret dermatofītiem: no eksperimentāliem infekcijas modeļiem līdz cilvēku slimībām. Priekšpuse. Immunol. 2020, 11, 605644. [CrossRef]

56. Genˇci´c, MS; Aksic, JM; Živkovi´c Stoši´c, MZ; Randjelovičs, PJ; Stojanovi´c, NM; Stojanovi´c-Radi´c, ZZ; Radulovi´c, NS Immortelle ēteriskās eļļas pretmikrobu un pretiekaisuma iedarbības sasaiste ar tās ķīmisko sastāvu — galveno un mazāko sastāvdaļu mijiedarbība. Food Chem. Toksikols. 2021, 158, 112666. [CrossRef] [PubMed]

57. A´cimovi´c, M.; Ljujič, J.; Vulič, J.; Željazkovs, VD; Pezo, L.; Varga, A.; Tumbas Šaponjac, V. Helichrysum Ital-icum (Roth) G. Don ēteriskā eļļa no Serbijas: ķīmiskais sastāvs, klasifikācija un bioloģiskā aktivitāte — vai tā var būt piemērota jauna kultūra Serbijai? Agronomija 2021, 11, 1282. [CrossRef]

58. Amorims, JL; Simas, DLR; Pinheiro, MMG; Moreno, DSA; Alviano, CS; da Silva, AJR; Dias Fernandes, P. Četru citrusaugļu sugu ēterisko eļļu pretiekaisuma īpašības un ķīmiskais raksturojums. PLoS ONE 2016, 11, e0153643. [CrossRef]

59. Askari, J.; de Oliveira, MS; Nunes, DS; Granato, D.; Šārfs, DR; Simionatto, E.; Otuki, M.; Soley, B.; Heidens, G. Baccharis punctulata (Asteraceae) vīriešu un sieviešu ēterisko eļļu ķīmiskais sastāvs, antioksidanta un pretiekaisuma iedarbība. J. Ethnopharmacol. 2019, 234, 1.–7. [CrossRef]

60. Singhs, P.; Sings, S.; Kapūrs, IPS; Sings, G.; Izidorovs, V.; Szczepaniak, L. Curcuma Zedoaria sakneņu ēteriskās eļļas un oleosveķu ķīmiskais sastāvs un antioksidanta iedarbība, -74. daļa. Pārtikas Biosci. 2013, 3, 42–48. [CrossRef]

61. Jēna, S.; Rejs, A.; Banerjee, A.; Sahoo, A.; Nasim, N.; Sahoo, S.; Kār, B.; Patnaiks, J.; Panda, dators; Nayak, S. Curcuma Angustifolia Roxb lapu un sakneņu ēteriskās eļļas ķīmiskais sastāvs un antioksidanta aktivitāte. Nat. Prod. Res. 2017, 31, 2188–2191. [CrossRef]

62. Andji'c, M.; Božins, B.; Dragini', N.; Koˇcovi´c, A.; Jeremiks, JN; Tomovičs, M.; Milojevi´c Šamanovi´c, A.; Kladars, N.; ˇCapo, I.; Jakovļevičs, V.; un citi. Uz Helichrysum Italicum ēterisko eļļu balstītu lokālu preparātu brūču dzīšanai žurkām ar diabētu formulēšana un novērtējums. Pharmaceuticals 2021, 14, 813. [CrossRef]

64. Ahlīna, FN; Nugraheni, N.; Salsabila, IA; Harianti, S.; Da'i, M.; Meiyanto, E. Atklājot Galangal (Alpinia Galanga L.) ekstrakta pret oksidatīvo stresu metastātiskām krūts vēža šūnām un normālām fibroblastu šūnām reverso efektu, kas paredzēts kā ķīmijterapijas un pretnovecošanās līdzeklis. Āzijas Pac. J. Cancer Iepr. 2020, 21, 107–117. [CrossRef]

64. Eiropas Padome. Eiropas Farmakopeja, 7. izd.; Eiropas Padomes Zāļu kvalitātes un veselības aprūpes direktorāts: Strasbūra, Francija, 2010. gads; ISBN 978-92-871-6700-2.

65. van den Dūls, H.; Kratz, PD Aiztures indeksa sistēmas vispārinājums, ieskaitot lineārās temperatūras programmētu gāzes-šķidruma sadalījuma hromatogrāfiju. J. Chromatogr. 1963, 11, 463–471. [CrossRef]

66. Klīnisko un laboratorijas standartu institūts. Atsauces metode buljona atšķaidīšanai pavedienu sēņu pretsēnīšu jutības pārbaudei; Apstiprināts standarts M38-A2, 2. izdevums; Klīnisko un laboratorijas standartu institūts: Wayne, PA, ASV, 2008; ISBN 1-56238-668-9.

67. Klīnisko un laboratorijas standartu institūts. Atsauces metode buljona atšķaidīšanai rauga sēnīšu pretsēnīšu jutības pārbaudei; Apstiprināts standarts M27-A3, 3. izdevums; Klīnisko un laboratorijas standartu institūts: Wayne, PA, ASV, 2008; ISBN 1-56238-666-2.

68. Grīns, LC; Vāgners, DA; Glogovskis, J.; kapteinis, PL; Wishnok, JS; Tannenbaum, SR Nitrātu, nitrītu un [15N]nitrātu analīze bioloģiskajos šķidrumos. Anal. Biochem. 1982, 126, 131–138. [CrossRef]

69. Pirass, A.; Mačioni, A.; Falkonjēri, D.; Porceda, S.; Gonsalves, MJ; Alvess-Silva, JM; Silva, A.; Krūza, MT; Salgeiro, L.; Maxia, A. Teucrium Scordium L. Subsp. ēteriskās eļļas ķīmiskais sastāvs un bioloģiskā aktivitāte. Scordioides (Schreb.) Arcang. (Lamiaceae) no Sardīnijas salas (Itālija). Nat. Prod. Res. 2021, 36, 5828–5835. [CrossRef] [PubMed]

70. Martinoti, S.; Ranzato, E. Skrāpējumu brūču dzīšanas pārbaude. Epidermas šūnās: metodes molekulārajā bioloģijā; Turkēns, K., Ed.; Humana: Ņujorka, NY, ASV, 2019; 2109. sējums, 225.–229. lpp.

Atruna/izdevēja piezīme:Visās publikācijās ietvertie paziņojumi, viedokļi un dati ir tikai un vienīgi katra(-u) autora(-u) un līdzstrādnieka(-u), nevis MDPI un/vai redaktora(-u) paziņojumi, viedokļi un dati. MDPI un/vai redaktors(-i) atsakās no atbildības par jebkādiem ievainojumiem cilvēkiem vai īpašumam, kas radies saturā minēto ideju, metožu, instrukciju vai produktu dēļ.