Pārskats par florotanīnu sastāvdaļām Fucales 4. daļā

6. Nobeiguma piezīmes

Rezumējot, Fucales veido plašu jūras aļģu sugu grupu ar ievērojamu florotanīna savienojumu mainīgumu. Spektrofotometriskie testi var būt noderīgs instruments augstas caurlaidības, vienkāršai un rentablai florotanīna satura skrīningam. Tomēr, lai atdalītu, kvantitatīvi noteiktu un raksturotu šos savienojumus, būtiskas ir spēcīgas analītiskās metodes. Pašlaik MS apvienojumā ar HPLC piedāvā apmierinošu pieeju oligomēru florotanīnu atdalīšanai un raksturošanai. Būtiski uzlabojumi tika veikti arī, izstrādājot specializētāku aprīkojumu, piemēram, UHPLC un HRMS. Tomēr, ja ir nepieciešama pilnīga informācija par savienojuma pozīcijām un izomēru formām, tikai KMR var piedāvāt šo jaudu.

Cistanche glikozīds var arī palielināt SOD aktivitāti sirds un aknu audos un būtiski samazināt lipofuscīna un MDA saturu katrā audā, efektīvi attīrot dažādus reaktīvos skābekļa radikāļus (OH-, H2O₂ utt.) un aizsargājot no izraisītiem DNS bojājumiem. ar OH-radikāļiem. Cistanche feniletanoīda glikozīdiem ir spēcīga brīvo radikāļu attīrīšanas spēja, augstāka reducējošā spēja nekā C vitamīnam, tie uzlabo SOD aktivitāti spermas suspensijā, samazina MDA saturu un zināmā mērā aizsargā spermas membrānas darbību. Cistanche polisaharīdi var uzlabot SOD un GSH-Px aktivitāti eksperimentāli novecojošu D-galaktozes izraisītu peļu eritrocītos un plaušu audos, kā arī samazināt MDA un kolagēna saturu plaušās un plazmā, kā arī palielināt elastīna saturu. laba attīrošā iedarbība uz DPPH, pagarina hipoksijas laiku novecojošām pelēm, uzlabo SOD aktivitāti serumā un aizkavē plaušu fizioloģisko deģenerāciju eksperimentāli novecojošām pelēm Ar šūnu morfoloģisko deģenerāciju eksperimenti ir parādījuši, ka Cistanche ir labas antioksidanta spējas un tas var būt zāles ādas novecošanās slimību profilaksei un ārstēšanai. Tajā pašā laikā ehinakozīdam Cistančā ir ievērojama spēja attīrīt DPPH brīvos radikāļus un novērst reaktīvās skābekļa sugas un novērst brīvo radikāļu izraisītu kolagēna noārdīšanos, kā arī tam ir laba iedarbība uz timīna brīvo radikāļu anjonu bojājumiem.

Neskatoties uz to, šī iekārta nav vispieejamākā/pieejamākā laboratorijām. Standarta savienojumu pieejamība varētu veicināt labāku HPLC izmantošanu, jo tas radītu uzticamas bibliotēkas salīdzināšanai. Alternatīvi, lai izpētītu un identificētu parastos PT savienojumus ar NMR spektroskopiju, saistot tos ar HPLC aiztures laikiem un UV spektra datiem, varētu būt vēl viens solis uz priekšu pētnieku aprindām.

Autora ieguldījums:Konceptualizācija — MDC un SMC; literatūras apskats un oriģinālā projekta rakstīšana — MDC, SMGP, SS, FC, SSB, DCGAP, AMSS, SMC Visi autori piedalījās rakstīšanā — pārskatīšanā un rediģēšanā. Visi autori ir izlasījuši un piekrituši publicētajai manuskripta versijai.

FinansējumsŠis darbs saņēma finansiālu atbalstu no PT valsts fondiem (FCT/MCTES, Fundação para a Ciência e Tecnologia un Ministério da Ciência, Tecnologia e Ensino Superior), izmantojot projektus UIDB/50006/2020 un UIDP/50006/2022. Pateicoties PTDC/BAA-AGR/31015/2017 "Algaphlor—Brown aļģu florotanīni: no biopieejamības līdz jaunu funkcionālu pārtikas produktu izstrādei", ko līdzfinansē Konkurētspējas un internacionalizācijas darbības programma — POCI, Eiropas Reģionālās attīstības fonda ietvaros. (FEDER) un Zinātnes un tehnoloģiju fondu (FCT), izmantojot valsts līdzekļus. Silva S. pateicas FCT par finansējumu, izmantojot programmu DL 57/2016–Norma transitória (Atsauce SFRH/BPD/74299/2010).

Interešu konflikti:Autori paziņo, ka nav interešu konflikta.

Atsauces

1. Čo, GY; Ruso, F.; de Reviers, B.; Bū, SM; Reviers, BDE; Čo, GY; Ruso, F.; Reviers, BDE filoģenētiskās attiecības Fucales (Phaeophyceae) ietvaros, ko novērtē Photosystem I kodēšanas PsaA sekvences. Phycologia 2006, 45, 512–519. [CrossRef]

2. Baveja, P.; Kumar, S.; Sahoo, D.; Levine, I. Jūras aļģu bioloģija. Jūras aļģēs veselībā un slimību profilaksē; Elsevier: Amsterdama, Nīderlande, 2016; 41.–106.lpp.

3. Bermejo, R.; Chefaoui, RM; Engelena, AH; Buonomo, R.; Neiva, J.; Fereira-Kosta, Dž.; Pīrsons, GA; Marba, N.; Duarte, CM; Airoldi, L.; un citi. Vidusjūras un Atlantijas okeāna Cystoseira tamariscifolia kompleksa jūras meži parāda Dienvidibērijas ģenētisko karsto punktu un bez reproduktīvās izolācijas Parapatrijā. Sci. Rep. 2018, 8, 10427. [CrossRef] [PubMed]

4. Montero, L.; Herrero, M.; Ibánezs, E.; Ibá, I.; Ibánezs, I.; Cifuentes, A. Florotanīnu atdalīšana un raksturojums no brūnaļģēm Cystoseira abies-marina ar visaptverošu divdimensiju šķidruma hromatogrāfiju. Elektroforēze 2014, 35, 1644–1651. [CrossRef] [PubMed]

5. Džegou, C.; Konnans, S.; Bihanniks, I.; Serantola, S.; Gērārs, F.; Stiger-Pouvreau, V. Floorotanīns un pigmenta saturs vietējās lapotnes veidojošo Sargassaceae sugas, kas dzīvo plūdmaiņu klinšu baseinos Bretaņā (Francija): vai ir kāda saistība ar to vertikālo izplatību un fenoloģiju? Mar. Drugs 2021, 19, 504. [CrossRef]

6. Guirijs, MD; Guirijs, GM; Sargassum, C. Agardh, 1820 — AlgaeBase. Vispasaules elektroniskā publikācija, Īrijas Nacionālā universitāte, Golveja.

7. Amadors-Kastro, F.; Garsija-Kajuela, T.; Alper, HS; Rodrigess-Martinezs, V.; Carrillo-Nieves, D. Pelaģiskās Sargassum biomasas valorizācija ilgtspējīgos lietojumos: pašreizējās tendences un izaicinājumi. J. Vide. Manag. 2021, 283, 112013. [CrossRef]

8. Daniels, SL; Kirils, B.; Leonel, P. Bio-Fertilizer ražošana no Ascophyllum nodosum un Sargassum muticum (Phaeophyceae). J. Oceanol. Limnols. 2019, 37, 918–927. [CrossRef]

9. Gafars Šahriari, A.; Mohkami, A.; Niazi, A.; Hamed Ghodoum Parizipour, M.; Habibi-Pirkoohi, M. Brūno aļģu (Sargassum angustifolium) ekstrakta izmantošana rapšu (Brassica napus L.) sausuma tolerances uzlabošanai. Irāna. J. Biotechnol. 2021, 19, e2775. [CrossRef]

10. Oliveira, JV; Alvess, MM; Costa, JC Biogāzes ražošanas optimizācija no Sargassum Sp. Eksperimentu plāna izmantošana, lai novērtētu līdzgremošanu ar glicerīnu un cepamo eļļu. Bioresurss. Tehn. 2015, 175., 480.–485. [CrossRef]

11. Džovanna Lopresto, C.; Paleta, R.; Filipelli, P.; Gallučo, L.; de la Rosa, C.; Amaro, E.; Žauregi-Haza, U.; Atilio de Frias, J. Sargassum invāzija Karību jūras reģionā: iespēja piekrastes kopienām ražot bioenerģiju, pamatojoties uz biorafinēšanas rūpnīcu — pārskats. Atkritumu biomasas valorizācija 2022, 13, 2769–2793. [CrossRef]

12. Luiss Godiness-Ortega, J.; Cuatlán-Cortés, JV; Lopess-Bautista, JM; van Tussenbroek, BI Peldošo sargasu sugu (Sargasso) dabas vēsture no Meksikas. Meksikas un Centrālamerikas dabas vēsturē un ekoloģijā; IntechOpen: Londona, Lielbritānija, 2021.

13. Soleimani, S.; Jusefzadi, M.; Nežada, SBM; Požaritskaja, ON; Šikovs, AN No Polycladia Myrica iegūto frakciju novērtējums: bioloģiskās aktivitātes, UVR aizsardzības efekts un krēma formulējuma stabilitāte, pamatojoties uz to. J. Appl. Phycol. 2022, 34, 1763–1777. [CrossRef]

14. Serrao, EA; Alise, LA; Brawley, SH Fucaceae (Phaeophyceae) evolūcija Infrred no NrDNA-ITS. J. Physiol. 1999, 35, 382–394. [CrossRef]

15. Patarra, RF; Paiva, L.; Neto, AI; Lima, E.; Baptista, J. Atlasītu makroaļģu uzturvērtība. J. Appl. Phycol. 2011, 23, 205–208. [CrossRef]

16. Lopes, G.; Barbosa, M.; Valleho, F.; Gil-Izquierdo, Á.; Andrade, PB; Valentao, P.; Pereira, DM; Ferreres, F. Florotanīnu profilēšana no Fucus spp. Ziemeļportugāles piekrastes līnija: ķīmiskā pieeja, izmantojot HPLC-DAD-ESI/MSn un UPLC-ESI-QTOF/MS. Algal Res. 2018, 29, 113–120. [CrossRef]

17. Stensberija, Dž. Saunders, P.; Winston, D. Veselīgas vairogdziedzera darbības veicināšana ar jodu, pūslīšu, Guggul un Iris. J. Restor. Med. 2013, 1, 83–90. [CrossRef]

18. Guirijs, MD; Guiry, GM Fucus Linnaeus, 1753 — AlgaeBase. Vispasaules elektroniskā publikācija, Īrijas Nacionālā universitāte, Golveja.

19. Rasuls, F.; Gupta, S.; Olas, JJ; Gečevs, T.; Sujeeth, N.; Mueller-Roeber, B. Gruntēšana ar jūras aļģu ekstraktu spēcīgi uzlabo Arabidopsis sausuma toleranci. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 1469. [CrossRef] [PubMed]

20. Šukla, PS; Mantins, EG; Adils, M.; Bajpai, S.; Kričlijs, AT; Prithiviraj, B. Ascophyllum nodosum balstīti biostimulanti: ilgtspējīgi pielietojumi lauksaimniecībā augu augšanas stimulēšanai, stresa tolerancei un slimību pārvaldībai. Priekšpuse. Augu Sci. 2019, 10, 655. [CrossRef] [PubMed]

21. Vodouhè, M.; Marois, J.; Gvaja, V.; Leblāns, N.; Veisnagels, SJ; Bilodeau, J.-F.; Jacques, H. Brūno jūraszāļu Ascophyllum nodosum un Fucus vesiculosus ekstrakta marginālā ietekme uz vielmaiņas un iekaisuma reakciju liekā svara un aptaukošanās prediabēta subjektiem. Mar. Drugs 2022, 20, 174. [CrossRef] [PubMed]

22. Freizers, CI; Vel, M.; Nelsons, Vašingtona; Makaja, EK; Hay, CH; Makartijs, C.; Velaskess, M.; Nelsons, Vašingtona; Makaja, EK; Hay, CH. Makroaļģu peldspējas bioģeogrāfiskā nozīme: Dienvidu vēršu brūnaļģu ģints Durvillaea (Phaeophyceae) gadījuma pētījums, tostarp divu jaunu sugu apraksti. J. Physiol. 2007, 56, 23–36. [CrossRef]

23. Kapons, RJ; Barrow, RA; Rochfort, S.; Jobliig, M.; Šķēne, C.; Lacey, E.; Gill, JH; Frīdels, T.; Vadsvorts, D.; Džoblings, M.; un citi. Jūras nematocīdi: Tetrahidrofurāni no Dienvidaustrālijas brūnaļģes, Notheia Anomaliz. Tetrahedron 1998, 54, 2227–2242. [CrossRef]

24. Mullers, R.; Raits, JT; Bolch, CJSS plaši izplatīto jūras aļģu Hormosira banksii (Phaeophyceae) vēsturiskā demogrāfija un kolonizācijas ceļi Austrālijas dienvidaustrumos. J. Physiol. 2018, 54, 56–65. [CrossRef]

25. Clayton, MN Dienvidu puslodes dzimtas Seirococcaceae (Phaeophyceae) aprakstīšanās un filoģenētiskās attiecības. Bot. 1994. gada marts, 37, 213–220. [CrossRef]

27. Kumar, LRG; Pols, PT; Anas, KK; Tejpal, CS; Chatterjee, NS; Anupama, TK; Metjū, S.; Ravishankar, CN florotanīni – bioaktivitātes un ekstrakcijas perspektīvas. J. Appl. Phycol. 2022, 34, 2173–2185. [CrossRef] [PubMed]

27. Hermunds, DB; Toršteinsens, H.; Vega, J.; Figueroa, Florida; Jacobsen, C. Jaunu kosmētisko līdzekļu skrīnings no brūnajām aļģēm Fucus vesiculosus ar antioksidantiem un fotoaizsardzības īpašībām. Marine Drugs 2022, 20, 687. [CrossRef]

28. Lashika Blue Filter sauļošanās krēms SPF 45 PA plus plus plus ar brūnajām jūraszālēm — 30 ml.

29. Hello Sunny Essence Sun Stick Glow SPF50 plus Pa plus plus plus plus.

30. Koivikko, R.; Loponens, J.; Honkanens, T.; Jormalainen, V. Šķīstošo, ar šūnu sienām saistīto un izdalīto florotanīnu saturs brūnajā aļģē Fucus vesiculosus, ar ietekmi uz to ekoloģiskajām funkcijām. J. Chem. Ecol. 2005, 31, 195–212. [CrossRef]

31. Maču, L.; Misurcova, L.; Vavra Ambrozova, J.; Orsavova, J.; Mlčeks, J.; Sočors, J.; Jurikova, T. Fenola saturs un antioksidantu kapacitāte aļģu pārtikas produktos. Molecules 2015, 20, 1118–1133. [CrossRef]

32. Sabīna Farvina, KH; Jacobsen, C. Dānijas piekrastes atsevišķu jūraszāļu sugu fenola savienojumi un antioksidantu aktivitātes. Food Chem. 2013, 138, 1670–1681. [CrossRef] [PubMed]

33. Kima, SM; Kanga, DR; Džeons, J.-S.; Jungs, Y.-J.; Kims, V.-R.; Kima, CY; Ak, B.-H. Galveno florotanīnu noteikšana velosipēdos Eisenia, izmantojot hidrofilās mijiedarbības hromatogrāfiju: sezonālās izmaiņas un ekstrakcijas īpašības. Food Chem. 2013, 138., 2399.–2406. [CrossRef]

34. Konnans, S.; Goulard, F.; Stīģeris, V.; Deslandes, E.; Gall, EA Starpsugu un laika variācijas florotanīna līmeņos brūno aļģu salikumā. Bot. 2004. gada marts, 47, 410–416. [CrossRef]

35. Lopes, G.; Sousa, C.; Silva, LR; Pinto, E.; Andrade, PB; Bernardo, Dž.; Mouga, T.; Valentão, P. Vai florotanīnu attīrītie ekstrakti var būt jauna farmakoloģiskā alternatīva mikrobu infekcijām ar saistītiem iekaisuma stāvokļiem? PLoS ONE 2012, 7, e31145. [CrossRef]

36. Obļučinskaja, ED; Požaritskaja, ON; Zaharovs, DV; Flisjuks, EV; Terninko, II; Generalova, YE; Smekhova, Īrija; Šikovs, AN Arktikas reģiona Fucus vesiculosus bioķīmiskais sastāvs un antioksidantu īpašības. Mar. Drugs 2022, 20, 193. [CrossRef]

37. Pedersen, A. Pētījumi par fenola saturu un smago metālu uzņemšanu fukoīdos. Vienpadsmitajā starptautiskajā jūraszāļu simpozijā. Notikumi hidrobioloģijā; Bird, CJ, Ragan, MA, Eds.; Springer: Dordrehta, Nīderlande, 1984; 22. sējums, 498.–504. lpp.

38. Konnans, S.; Stengel, DB Apkārtējās vides sāļuma un vara ietekme uz brūnajām aļģēm: 2. Interaktīvā ietekme uz fenola baseinu un florotanīna metālu saistošās spējas novērtējums. Aquat. Toksikols. 2011, 104, 1.–13. [CrossRef] [PubMed]

39. Kamija, M.; Nišio, T.; Jokojama, A.; Jatsuja, K.; Nišigaki, T.; Jošikava, S.; Ohki, K. florotanīna sezonālās izmaiņas Sargassacean sugās no Japānas jūras krasta. Phycol. Res. 2010, 58, 53–61. [CrossRef]

40. Ragan, MA; Jensens, A. Kvantitatīvie pētījumi par brūnaļģu fenoliem. II. Sezonālās izmaiņas polifenola saturā Ascophyllum Nodosum (L.) Le Jol. un Fucus vesiculosus (L.). J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1978, 34, 245–258. [CrossRef]

41. Pāvija, H.; Toth, GB Gaismas un slāpekļa ietekme uz brūno jūraszāļu Ascophyllum nodosum un Fucus vesiculosus florotanīna saturu. Hydrobiologia 2000, 440, 299–305. [CrossRef]

42. Pāvija, H.; Brock, E. Ārējie faktori, kas ietekmē florotanīna ražošanu brūnās aļģēs Ascophyllum nodosum. Mar. Ekol. Prog. Ser. 2000, 193, 285–294. [CrossRef]

43. Tāla, F.; Velaskess, M.; Mansilla, A.; Makaja, EK; Thiel, M. Platuma un sezonālā ietekme uz peldošo brūnaļģes sugu īstermiņa aklimatizāciju no Klusā okeāna dienvidaustrumiem. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2016, 483., 31.–41. [CrossRef]

45. Sardari, RRRR; Prothmann, J.; Grēgersens, O.; Tērners, C.; Karlsson, EN Florotanīnu identificēšana brūnajās aļģēs, Saccharina Latissima un Ascophyllum nodosum ar īpaši augstas veiktspējas šķidruma hromatogrāfiju, kas savienota ar augstas izšķirtspējas tandēma masas spektrometriju. Molecules 2021, 26, 43. [CrossRef]

45. Tīrnijs, MS; Solers-Vila, A.; Rai, DK; Krofts, AK; Bruntons, NP; Smyth, TJ UPLC-MS Zemas molekulmasas florotanīna polimēru profilēšana Ascophyllum nodosum, Pelvetia canaliculata un Fucus spiralis. Metabolomika 2014, 10, 524–535. [CrossRef]

46. ​​Catarino, MD; Silva, AAMS; Krūza, MT; Mateus, N.; Silva, AAMS; Cardoso, SM Florotanīni no Fucus vesiculosus: iekaisuma reakcijas modulācija, bloķējot NF-KB signalizācijas ceļu. Int. J. Mol. Sci. 2020, 21, 6897. [CrossRef]

47. Ferreres, F.; Lopes, G.; Gil-Izkjerdo, A.; Andrade, PB; Sousa, C.; Mouga, T.; Valentão, P. Phlorotanīna ekstrakti no fucales, ko raksturo HPLC-DAD-ESI-MSn: pieejas hialuronidāzes inhibēšanas spējai un antioksidantu īpašībām. Mar. Drugs 2012, 10, 2766–2781. [CrossRef]

48. Catarino, MD; Silva, AMS; Mateus, N.; Cardoso, SM Florotanīnu ekstrakcijas no Fucus vesiculosus optimizācija un to potenciāla novērtējums, lai novērstu vielmaiņas traucējumus. Mar. Drugs 2019, 17, 162. [CrossRef] [PubMed]

49. Li, Y.; Fu, X.; Duans, D.; Liu, X.; Sju, JJJ; Gao, X. Florotanīnu ekstrakcija un identificēšana no brūnaļģes, Sargassum fusiform (Harvey) Setchell. Mar. Drugs 2017, 15, 49. [CrossRef] [PubMed]

50. Van, T.; Jónsdotirs, R.; Liu, H.; Gu, L.; Kristinsons, HG; Ragavans, S.; Ólafsdóttir, G. No brūnajām aļģēm Fucus vesiculosus iegūto florotanīnu antioksidantu spējas. J. Agric. Food Chem. 2012, 60, 5874–5883. [CrossRef] [PubMed]

51. Obļučinskaja, ED; Daurceva, AV; Požaritskaja, ON; Flisjuks, EV; Šikovs, AN dabiskie dziļie eitektiskie šķīdinātāji kā alternatīvas florotanīnu ekstrakcijai no brūnajām aļģēm. Pharm. Chem. J. 2019, 53, 243–247. [CrossRef]

53. Kadam, SU; Tiwari, BK; O'Donels, CP; O'Donnell, CP Jaunu ekstrakcijas tehnoloģiju izmantošana bioaktīvo vielu no jūras aļģēm. J. Agric. Food Chem. 2013, 61, 4667–4675. [CrossRef] [PubMed]

54. Mihalaks, I.; Chojnacka, K. Aļģu ekstrakti: tehnoloģija un sasniegumi. Inž. Life Sci. 2014, 14, 581–591. [CrossRef]

54. Grosso, C.; Valentao, P.; Ferreres, F.; Andrade, PB; Mayer, AM Alternatīvas un efektīvas ekstrakcijas metodes jūrā iegūtiem savienojumiem. Mar. Drugs 2015, 13, 3182–3230. [CrossRef]

55. Mengs, V.; Mū, T.; Saule, H.; Garcia-Vaquero, M. Florotanīni: ekstrakcijas metožu pārskats, strukturālās īpašības, bioloģiskās aktivitātes, biopieejamība un nākotnes tendences. Algal Res. 2021, 60, 102484. [CrossRef]

57. Lopes, G.; Barbosa, M.; Andrade, PB; Valentão, P. Florotanīni no Fucales: potenciāls kontrolēt hiperglikēmiju un ar diabētu saistītas asinsvadu komplikācijas. J. Appl. Phycol. 2019, 31, 3143–3152. [CrossRef]

57. Obļučinskaja, ED; Požaritskaja, ON; Zaharova, LV; Daurceva, AV; Flisjuks, EV; Šikovs, Dabisko dziļo eitektisko šķīdinātāju efektivitāte hidrofilo un lipofilo savienojumu ekstrakcijai no Fucus vesiculosus. Molecules 2021, 26, 4198. [CrossRef]

58. Habeebullah, SFK; Alagarsamijs, S.; Sattari, Z.; Al-Hadads, S.; Fahraldīns, S.; Al-Ghunaim, A.; Al-Yamani, F. Bioaktīvo savienojumu ekstrakcija ar enzīmu palīdzību no brūnajām jūraszālēm un raksturojums. J. Appl. Phycol. 2020, 32, 615–629. [CrossRef]

59. Ank, G.; Antonio Peress Da Gama, B.; Pereira, RC florotanīna satura platuma variācijas no Dienvidrietumu Atlantijas brūnajām jūraszālēm. PeerJ 2019, 7, e7379. [CrossRef] [PubMed]

60. Tabasums, MR; Sja, A.; Mērfijs, Dž.D. Ķīmiskā sastāva un biometāna ražošanas sezonālās izmaiņas no brūnās jūraszāles Ascophyllum nodosum. Bioresurss. Tehn. 2016., 216., 219.–226. [CrossRef]

61. Hermunds, DB; Heungs, SY; Tomsens, BR; Akoh, CC; Jacobsen, C. Ādas kopšanas emulsiju oksidatīvās stabilitātes uzlabošana ar brūnaļģu Fucus vesiculosus antioksidantu ekstraktiem. J. Am. Oil Chem. Soc. 2018, 95, 1509–1520. [CrossRef]

63. Ummat, V.; Tiwari, BK; Jaiswal, AK; Kondons, K.; Garsija-Vakero, M.; O'Dohertijs, Dž.; O'Donels, C.; Rajauria, G. Ultraskaņas frekvences, ekstrakcijas laika un šķīdinātāja optimizācija polifenolu, florotanīnu un ar to saistītās antioksidantu aktivitātes atjaunošanai no brūnajām jūraszālēm. Mar. Drugs 2020, 18, 250. [CrossRef]

63. Sumampouw, GA; Džeikobsens, C.; Getachew, AT Fenola antioksidantu ekstrakcijas no Fucus vesiculosus optimizēšana, izmantojot spiediena šķidruma ekstrakciju. J. Appl. Phycol. 2021, 33, 1195–1207. [CrossRef]

64. Yuan, Y.; Džans, Dž.; Fans, Dž.; Klārks, Dž.; Šens, P.; Li, Y.; Zhang, C. Fenola savienojumu ekstrakcija ar mikroviļņu palīdzību no četrām ekonomiskajām brūno makroaļģu sugām un to antioksidantu aktivitāšu un amilāzes, glikozidāzes, aizkuņģa dziedzera lipāzes un tirozināzes inhibējošās ietekmes novērtējums. Food Res. Int. 2018, 113., 288.–297. [CrossRef]

65. ˇCagalj, M.; Skroza, D.; Tabanelli, G.; Ezoguls, F.; Šimat, V. Padina pavonica antioksidantu kapacitātes palielināšana, izvēloties pareizās žāvēšanas un ekstrakcijas metodes. Processes 2021, 9, 587. [CrossRef]

67. Amarante, SJ; Catarino, MD; Marsāls, C.; Silva, AMS; Fereira, R.; Cardoso, SM Florotanīnu ekstrakcija no Fucus vesiculosus ar mikroviļņu palīdzību. Mar. Drugs 2020, 18, 559. [CrossRef]

67. Bjans, C.; Gao, J.; Lengs, X.; Saule, C.; Dai, L.; Xu, Z. Mitrumu aizturošs šķidrums un tā pagatavošanas metode. Ķīnas patents CN103520065A, 2014. gada 22. janvāris.

68. da Silva, JRM; Alvess, CMM; Pinteus, SFG; Mārtiņš, AIM; Freitas, RPF; Pedrosa, RFP Ar florotanīnu bagātināta ekstrakta iegūšanas process ar anti-enzīmu iedarbību izmantošanai dermatoloģijā. Eiropas patents EP3910064, 2021. gada 17. novembris.

69. Prigent, A. Jūras aļģu ekstraktu iegūšanas metode. Starptautiskais patents WO2015071477A1, 2015. gada 21. maijs.

70. Stigers-Puavro, V.; Konnans, S.; Gager, L.; Koifards, L.; Kuto, C.; Decoster, S.; Gombault, LN; Cotterei, C.; Mahe, A. Brūno aļģu ekstrakti, tostarp fenola savienojumi, un to izmantošana kosmētikā. Francijas patents FR3095348A1, 2020. gada 30. oktobris.

71. Tae, HL; Lī, Dž. M.; Park, SY. Process ar enzīmiem apstrādātu Hizikia fusiforme ekstraktu pagatavošanai, kam ir imūnsistēmas uzlabošanas aktivitāte un funkcionāls pārtikas un farmaceitiskais sastāvs, kas satur to pašu. Korejas patents KR20140032101A, 2014. gada 14. marts.

73. Liu, X.; Yuan, W.; Šarma-Šivapa, R.; Zanten, J. Van Brūno aļģu florotanīnu antioksidanta aktivitāte. Int. J. Agric. Biol. Inž. 2017, 10, 184–191. [CrossRef]

73. Abdelhamids, A.; Žuīni, M.; Bel Haj Amor, H.; Mzoughi, Z.; Dridi, M.; Bens Saids, R.; Bouraoui, A. Trīs Vidusjūras brūno jūras aļģu florotanīnu bagāto frakciju antioksidantu, pretiekaisuma un antinociceptīvā potenciāla fitoķīmiskā analīze un novērtējums. Mar. Biotechnol. 2018, 20, 60–74. [CrossRef] [PubMed]

74. Lamuela-Raventós, RM Folin-Ciocalteu Metode kopējā fenola satura un antioksidantu kapacitātes mērīšanai. Antioksidantu aktivitātes un kapacitātes mērīšana: jaunākās tendences un pielietojumi; John Wiley & Sons, Ltd.: Hoboken, NJ, ASV, 2017; 107.–115.lpp. ISBN 9781119135388.

75. Kotass, J.; Leandro, A.; Monteiro, P.; Pačeko, D.; Figueirinha, A.; Gonc ˛alves, AMM; da Silva, GJ; Pereira, L. Jūras aļģu fenoli: no ekstrakcijas līdz lietojumiem. Mar. Drugs 2020, 18, 384. [CrossRef] [PubMed]

76. Everete, Dž.D.; Braients, QM; Zaļš, AM; Abbey, YA; Vangila, GW; Walker, RB. Pamatīgs pētījums par dažādu savienojumu klašu reaktivitāti pret Folin-Ciocalteu reaģentu. J. Agric. Food Chem. 2010, 58, 8139–8144. [CrossRef] [PubMed]

78. Šterns, JL; Hagerman, AE; Šteinberga, PD; Ziema, FC; Estes, JA Jauns tests brūnaļģu florotanīnu kvantitatīvai noteikšanai un salīdzinājumi ar iepriekšējām metodēm. J. Chem. Ecol. 1996, 22, 1273–1293. [CrossRef]

78. Stīvenšs, AJ; MacKinnon, SL; Hankinsons, R.; Craft, C.; Konnans, S.; Stengels, DB; Melanson, JE Florotanīnu profilēšana brūnajās makroaļģēs ar šķidruma hromatogrāfijas augstas izšķirtspējas masas spektrometriju. Phytochem. Anal. 2012, 23, 547–553. [CrossRef]

79. Agregāns, R.; Munekata, PES; Franko, D.; Domingess, R.; Karbalo, Dž.; Lorenzo, JM fenola savienojumi no trīs brūno jūraszāļu sugām, izmantojot LC-DAD-ESI-MS/MS. Food Res. Int. 2017, 99, 979–985. [CrossRef]

80. Glombica, KW; Schmidt, A. Trihydroxyphlorethols no Brown Alga Carpophyllum angustifolium. Fitoķīmija 1999, 51, 1095–1100. [CrossRef]

81. Sailler, B.; Glombitza, KW Phlorethols un Fucophlorethols no Brown Alga Cystophora retroflexa. Phytochemistry 1999, 50, 869–881. [CrossRef]

82. Glombica, KW; Keusgens, M.; Hauperich, S. Fucophlorethols no brūnajām aļģēm Sargassum spinuligerum un Cystophora torulosa. Fitoķīmija 1997, 46, 1417–1422. [CrossRef]

83. Glombica, KW; Keusgen, M. Fuhalols un Deshydroxyfuhalols no Brown Alga Sargassum spinuligerum. Fitoķīmija 1995, 38, 987–995. [CrossRef]

84. Glombica, KW; Schmidt, A. Nehalogenētie un halogenētie florotanīni no brūnaļģes Carpophyllum angustifolium. J. Nat. Prod. 1999, 62, 1238–1240. [CrossRef]

85. Kohs, M.; Gregsons, RP bromētie floretoli un nehalogenētie florotanīni no brūnaļģes Cystophora pārslogoti. Fitoķīmija 1984, 23, 2633–2637. [CrossRef]

86. Sailler, B.; Glombitza, KW halogenētie floretoli un fukofloretoli no Brown Alga Cystophora retroflexa. Nat. Toxins 1999, 7, 57–62. [CrossRef]

88. Koivikko, R.; Loponens, J.; Pihlaja, K.; Jormalainens, V. Brown Alga Fucus vesiculosus florotanīnu augstas veiktspējas šķidruma hromatogrāfiskā analīze. Phytochem. Anal. 2007, 18, 326–332. [CrossRef] [PubMed]

88. Korona, G.; Ji, Y.; Anegboonlap, P.; Hočkiss, S.; Gill, C.; Yaqoob, P.; Spensers, JPE; Rowland, I. Kuņģa-zarnu trakta modifikācijas un brūno jūraszāļu florotanīnu biopieejamība un ietekme uz iekaisuma marķieriem. Br. J. Nutr. 2016, 115., 1240.–1253. [CrossRef] [PubMed]

89. Sentkovska, A.; Pyrzynska, K. HILIC Hromatogrāfija: spēcīgs paņēmiens polifenolu analīzē. In polifenoli augos; Akadēmiskā prese: Kembridža, MA, ASV, 2019; 341.–351.lpp. [CrossRef]

90. Marrubini, G.; Appelblad, P.; Maieta, M.; Papetti, A. Hidrofilās mijiedarbības hromatogrāfija pārtikas matricu analīzē: atjaunināts pārskats. Food Chem. 2018., 257., 53.–66. [CrossRef]

92. Piržinska, K.; Sentkowska, A. Jaunākie notikumi fenola pārtikas savienojumu HPLC separācijā. Krit. Rev. Anal. Chem. 2015, 45, 41–51. [CrossRef]

92. Montero, L.; Sančess-Kamargo, AP; Garsija-Kaņass, V.; Tanniou, A.; Stigers-Puvero, V.; Russo, M.; Rastrelli, L.; Cifuentes, A.; Herrero, M.; Ibáñez, E. Antiproliferatīvā darbība un ķīmiskais raksturojums ar visaptverošu divdimensiju šķidruma hromatogrāfiju, kas savienota ar florotanīnu masas spektrometriju no brūnās makroalgas Sargassum muticum, kas savākta Ziemeļatlantijas piekrastē. J. Chromatogr. 2016, 1428, 115–125. [CrossRef]

93. Swartz, M. HPLC detektori: īss pārskats. J. Liq. Hromatogr. Relat. Tehn. 2010, 33, 1130–1150. [CrossRef]

95. Vissers, AM; Kaligiani, A.; Sforza, S.; Vincken, JP; Gruppen, H. Phlorotanīns Laminaria digitata sastāvs. Phytochem. Anal. 2017, 28, 487–495. [CrossRef]

95. Olate-Gallegos, C.; Barriga, A.; Vergara, C.; Fredess, C.; Garsija, P.; Gimeness, B.; Robert, P. Polifenolu identificēšana no Čīles brūno jūraszāļu ekstraktiem, izmantojot LC-DAD-ESI-MS/MS. J. Aquat. Pārtikas Prod. Tehn. 2019, 28, 375–391. [CrossRef]

96. Catarino, MD; Fernandess, I.; Oliveira, H.; Karaskals, M.; Fereira, R.; Silva, AMS; Krūza, MT; Mateus, N.; Cardoso, SM No Fucus vesiculosus iegūto florotanīnu pretvēža aktivitāte, aktivizējot apoptotiskos signālus kuņģa un kolorektālā audzēja šūnu līnijās. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 7604. [CrossRef] [PubMed]

98. Audiberts, L.; Faušons, M.; Blanc, N.; Haučards, D.; Ar Gall, E.; Gall, EA Fenola savienojumi brūnajās jūraszālēs Ascophyllum nodosum: izplatīšana un radikāļu attīrīšanas aktivitātes. Phytochem. Anal. 2010, 21, 399–405. [CrossRef]

98. Hefernans, N.; Bruntons, NP; Ficdžeralds, RJ; Smyth, TJ No makroaļģēm iegūto florotanīnu molekulmasas un strukturālo izomēru daudzuma profilēšana. Mar. Drugs 2015, 13, 509–528. [CrossRef]

99. Kirke, DA; Smits, TJ; Rai, DK; Kenijs, O.; Stengel, DB. Izolētu zemas molekulmasas florotanīnu ķīmiskā un antioksidantu stabilitāte. Food Chem. 2017, 221, 1104–1112. [CrossRef] [PubMed]

100. Džans, R.; Yuen, AKL; Magnusons, M.; Raits, JT; de Nys, R.; Masters, AF; Maschmeyer, T. Brūnās jūraszāles Carpophyllum flexuosum florotanīnu aktivitātes un struktūras salīdzinošais novērtējums. Algal Res. 2018, 29., 130.–141. [CrossRef]

101. Allwood, JW; Evans, H.; Ostins, C.; McDougall, GJ ekstrakcija, bagātināšana un LC-MSn bāzes florotanīnu un saistīto fenolu raksturojums no brūnajām jūraszālēm, Ascophyllum nodosum. Mar. Drugs 2020, 18, 448. [CrossRef]

102. Koivikko, R.; Erenens, JK; Loponens, J.; Jormalainens, V. Florotanīnu variācijas trīs Fucus vesiculosus populācijās, ko atklāj HPLC un kolorimetriskā kvantitatīva noteikšana. J. Chem. Ecol. 2008, 34, 57–64. [CrossRef]

103. Kirke, DA; Rai, DK; Smits, TJ; Stengel, DB. Zemas molekulmasas florotanīna profilu laika izmaiņu novērtējums četrās starpplūduma brūnajās makroaļģēs. Algal Res. 2019, 41, 101550. [CrossRef]

104. Parys, S.; Kehraus, S.; Kriks, A.; Glombica, KW; Karmeli, S.; Klimo, K.; Gerhaizers, C.; König, GM, brūnās aļģes Fucus vesiculosus L. fukofloretolu ķīmiski profilaktiskais potenciāls in vitro, izmantojot antioksidantu aktivitāti un atlasīto citohroma P450 enzīmu inhibīciju. Fitoķīmija 2010, 71, 221–229. [CrossRef]

105. Hermunds, DB; Plaza, M.; Tērners, C.; Jónsdotirs, R.; Kristinsons, HG; Džeikobsens, C.; Nīlsens, KF Īslandes Fucus vesiculosus florotanīnu struktūras atkarīgā antioksidanta kapacitāte, izmantojot UHPLC-DAD-ECD-QTOFMS. Food Chem. 2018, 240, 904–909. [CrossRef] [PubMed]

106. Ovčiņņikovs, DV; Bogoļicins, KG; Družinina, AS; Kapļicins, PA; Paršina, AE; Pikovskoi, II; Khoroshev, OY; Turova, PN; Stavrianidi, AN; Shpigun, OA Pētījums par polifenola komponentiem Fucus vesiculosus tipa arktisko brūnaļģu ekstraktos, izmantojot šķidruma hromatogrāfiju un masas spektrometriju. J. Anal. Chem. 2020, 75, 633–639. [CrossRef]

107. Kellogs, Dž. Greisa, MH; Lila, MA Aļaskas jūras aļģu florotanīni kavē karbolītisko enzīmu aktivitāti. Mar. Drugs 2014, 12, 5277–5294. [CrossRef] [PubMed]

108. Kellogs, Dž. Espozito, D.; Greisa, MH; Komarnickis, S.; Lila, MA Aļaskas jūraszāles samazina iekaisumu RAW 264.7 makrofāgos un samazina lipīdu uzkrāšanos 3T3-L1 adipocītos. J. Funkcija. Foods 2015, 15, 396–407. [CrossRef]

109. Boldrika, FR; Makfadens, K.; Ibars, M.; Sung, C.; Mofats, T.; Megarijs, K.; Tomass, K.; Mičels, P.; Wallace, JMW; Pourshahidi, LK; un citi. Ar (poli)fenolu bagāta ekstrakta no brūnās aļģes Ascophyllum nodosum ietekme uz DNS bojājumiem un antioksidantu aktivitāti populācijā ar lieko svaru vai aptaukošanos: randomizēts kontrolēts pētījums. Am. Dž.Klins. Nutr. 2018, 108, 688–700. [CrossRef]

110. Vaskess-Rodrigess, B.; Gutiérrez-Uribe, JA; Antūns-Rikardo, M.; Santos-Zea, L.; Cruz-Suárez, LE Florotanīnu un polisaharīdu ekstrakcija ar ultraskaņu no Silvetia compressa (Phaeophyceae). J. Appl. Phycol. 2020, 32, 1441–1453. [CrossRef]

111. Keusgens, M.; Glombitza, KW Phlorethols, Fuhalols un to atvasinājumi no Brown Alga Sargassum spinuligerum. Fitoķīmija 1995, 38, 975–985. [CrossRef]

112. Keusgens, M.; Glombitza, KW Pseudofuhalols no Brown Alga Sargassum spinuligerum. Fitoķīmija 1997, 46, 1403–1415. [CrossRef]

113. Vidžajans, R.; Čitra, L.; Penislušjans, S.; Palvannan, T. Sargassum wightii bioaktīvās frakcijas izpēte: Angiotenzīnu-i-konvertējošā enzīma inhibīcijas un antioksidantu potenciāla in vitro noskaidrošana. Int. J. Food Prop. 2018, 21, 674–684. [CrossRef]

114. Kords, A.; Foudil-Cherif, Y.; Amiali, M.; Boumechhour, A.; Benfares, R. Florotanīnu sastāvs, radikālas attīrīšanas spēja un fenolu samazināšanas spēja no brūnās aļģes Cystoseira sauvageauana. J. Aquat. Pārtikas Prod. Tehn. 2021, 30, 426–438. [CrossRef]

115. Gheda, S.; Naby, MA; Mohameds, T.; Pereira, L.; Khamis, A. Florotanīnu pretdiabēta un antioksidanta aktivitāte, kas iegūta no brūnās jūraszāles Cystoseira kompreses streptozotocīna izraisītās diabēta žurkās. Vide. Sci. Piesārņo. Res. 2021, 28, 22886–22901. [CrossRef] [PubMed]

116. Trifans, A.; Vasinču, A.; Lūka, SV; Neophytou, C.; Volframs, E.; Opitz, SEW; Sava, D.; Bucur, L.; Cioroiu, BI; Mirons, A.; un citi. Rumānijas Melnās jūras piekrastes jūras aļģu kā bioaktīvo savienojumu avotu potenciāla atrašana. I daļa: Cystoseira barbata (Stackhouse) C. Agardh. Food Chem. Toksikols. 2019, 134, 110820. [CrossRef] [PubMed]

117. Gonsalvess-Fernándezs, C.; Sineiro, J.; Moreira, R.; Gualillo, O. Ar florotanīnu bagātināto frakciju ekstrakcija un raksturojums no Atlantijas jūraszāles Bifurcaria bifurcata un to citotoksiskās aktivitātes novērtējums peles šūnu līnijā. J. Appl. Phycol. 2019, 31, 2573–2583. [CrossRef]

118. Catarino, MD; Alvess-Silva, JM; Falkao, SI; Vilas-Boass, M.; Jordão, M.; Cardoso, SM Hromatogrāfija kā rīks bioaktīvo savienojumu identificēšanai botāniskās izcelsmes medus bišu produktos. Ķīmijā, bioloģijā un medus bišu augu izcelsmes produktu potenciālajos pielietojumos; Cardoso, SM, Silva, AMS, Eds.; Bentham Science Publishers: Šārdža, Apvienotie Arābu Emirāti, 2016; 89.–149.lpp. ISBN 9781681082370.

119. Fords, L.; Teodoridū, K.; Šeldreiks, GN; Walsh, PJ. Kritisks pārskats par analītiskajām metodēm, kas izmantotas florotanīna savienojumu ķīmiskajai raksturošanai un kvantitatīvai noteikšanai brūnās jūraszālēs. Phytochem. Anal. 2019, 30, 587–599. [CrossRef] [PubMed]

120. Isaza Martinesa, JH; Torres Castañeda, HG sagatavošana un florotanīnu hromatogrāfiskā analīze. J. Chromatogr. Sci. 2013, 51, 825–838. [CrossRef]

121. Rajauria, G. Reversās fāzes HPLC metodes optimizācija un validācija polifenolu kvalitatīvai un kvantitatīvai novērtēšanai jūraszālēs. J. Pharm. Biomed. Anal. 2018, 148., 230.–237. [CrossRef]

122. Kumar, Y.; Singāls, S.; Tarafdars, A.; Farande, A.; Ganešāns, M.; Badgujar, PC atlasītu ēdamo makroaļģu ekstrakcija ar ultraskaņu: ietekme uz antioksidantu aktivitāti un polifenolu kvantitatīvais novērtējums, izmantojot šķidruma hromatogrāfiju ar tandēma masas spektrometriju (LC-MS/MS). Algal Res. 2020, 52, 102114. [CrossRef]

123. Catarino, DM; Silva, MA; Cardoso, MS Fucaceae: Bioaktīvo florotanīnu avots. Int. J. Mol. Sci. 2017, 18, 1327. [CrossRef]

124. Pantidos, N.; Boath, A.; Lunds, V.; Koners, S.; McDougall, GJ ar fenolu bagāti ekstrakti no ēdamajām jūraszālēm, Ascophyllum nodosum, inhibē amilāzi un glikozidāzi: iespējama antihiperglikēmiska iedarbība. J. Funkcija. Pārtika 2014, 10, 201–209. [CrossRef]

125. Kartiks, R.; Manigandans, V.; Šība, R.; Saravanāns, R.; Rajesh, Indijas brūno jūras aļģu floroglucinola PR strukturālais raksturojums un salīdzinošās biomedicīnas īpašības. J. Appl. Phycol. 2016, 28, 3561–3573. [CrossRef]

126. Parys, S.; Kehraus, S.; Pīts, R.; Küpper, FC; Glombica, K.-W.; König, ĢM polifenolu sezonālās izmaiņas Ascophyllum nodosum (Phaeophyceae). Eiro. J. Physiol. 2009, 44, 331–338. [CrossRef]

127. Šresta, S.; Džans, V.; Smid, SD florotanīni: pārskats par biosintēzi, ķīmiju un bioaktivitāti. Pārtikas Biosci. 2021, 39, 100832. [CrossRef]

128. Erpel, F.; Mateoss, R.; Peress-Džimeness, J.; Pérez-Correa, JR Florotanīni: no izolācijas un struktūras raksturojuma līdz to pretdiabēta un pretvēža potenciāla novērtēšanai. Food Res. Int. 2020, 137, 109589. [CrossRef] [PubMed]

129. Džegou, C.; Kervarec, N.; Serantola, S.; Bihanniks, I.; Stiger-Pouvreau, V. KMR izmantošana florotanīnu kvantitatīvai noteikšanai: Cystoseira tamariscifolia, floroglucinolu ražojošas brūnās makroaļģes gadījums Bretaņā (Francija). Talanta 2015, 135, 1.–6. [CrossRef]

130. Džegou, C.; Kulioli, G.; Kervarec, N.; Saimons, G.; Stiger-Pouvreau, V. LC/ESI-MSn un 1H HR-MAS KMR analīzes metodes kā noderīgi taksonomijas rīki Cystoseira ģintī C. Agardh (Fucales; Phaeophyceae). Talanta 2010, 83, 613–622. [CrossRef]

131. Fords, L.; Stratakos, AC; Teodoridū, K.; Diks, JTA; Šeldreiks, GN; Lintons, M.; Corcionivoschi, N.; Walsh, PJ Polifenoli no brūnajām jūraszālēm kā potenciāls pretmikrobu līdzeklis dzīvnieku barībā. ACS Omega 2020, 5, 9093–9103. [CrossRef]

132. Glombica, KW; Rozeners, HU; Müller, D. Bifuhalol Und Diphlorethol Aus Cystoseira tamariscifolia. Fitoķīmija 1975, 14, 1115–1116. [CrossRef]

133. Džeikobsens, C.; Sērensens, A.‑DM; Holdt, SL; Akoh, CC; Hermunds, DB raksturojums un jaunu jūras aļģu antioksidantu pielietojums. Annu. Rev. Food Sci. Tehn. 2019, 10, 541–568. [CrossRef]

134. Mateoss, R.; Pérez-Correa, JR; Domínguez, H. Jūras fenola bioaktīvās īpašības. Mar. Drugs 2020, 18, 501. [CrossRef]

135. Glombica, KW; Hauperihs, S.; Keusgen, M. Florotanīni no brūnajām aļģēm Cystophora torulosa un Sargassum spinuligerum. Nat. Toxins 1997, 5, 58–63. [CrossRef]

136. Kohs, M.; Glombica, KW; Rösener, HU Polihidroksifenilēteri no Bifurcaria bifurcata. Fitoķīmija 1981, 20, 1373–1379. [CrossRef]

137. Serantola, S.; Bretons, F.; Gall, EA; Deslandes, E. Fucol un Fucophlorethol klases polimēru fenolu līdzāsparādīšanās un antioksidantu aktivitātes Fucus spiralis. Bot. 2006. gada marts, 49., 347.–351. [CrossRef]

138. McInnes, AG; Ragan, MA; Smits, ģenerāldirektorāts; Walter, JA Jūras brūnaļģu Fucus vesiculosus L. 1H un 13C kodolmagnētiskās rezonanses spektroskopija lielmolekulārie polifloroglucinoli. Var. J. Chem. 1985, 63, 304–313. [CrossRef]

139. le Lann, K.; Surget, G.; Kuto, C.; Koifards, L.; Serantola, S.; Geilārs, F.; Larnikols, M.; Zubia, M.; Gērārs, F.; Puparts, N.; un citi. Brown Macroalga Halidrys siliquosa florotanīnu saules aizsargkrēmu, antioksidantu un baktericīdu spējas. J. Appl. Phycol. 2016, 28, 3547–3559. [CrossRef]