Ar Aspergillus Oryzae un Aspergillus Cristatus raudzētu rīsu kodži metabolītu profilēšana un pretnovecošanās darbība: salīdzinošs pētījums Ⅱ

3. Diskusija

Dažādām rīsu daļām, piemēram, mizām, klijām, embrijiem un endospermam, sākot no virsmas līdz iekšpusei, ir atšķirīgs ķīmiskais sastāvs (26). Jo īpaši rīsu klijas satur dažādasfenola skābesunflavonoīdi, kas, kā zināms, tiek izstādītiantioksidanta aktivitāte.Turklāt rīsu šūnu siena sastāv no arabinoksilāna struktūras, kas ietver ksilozi, arabinozi, ferulskābi un ferulskābi (27). Rīsu šūnu sienā parasti ir grūti iekļūt, un rīsu koji piedāvā vieglu iekļūšanu šūnā. rīsu šūnu sienu ar dažādiem enzīmiem, piemēram, proteāzi un glikozidāzi no inokulāta mikrobiem (24. Tāpēc rīsu koii parādaaugstāks tirozināzes inhibējošās aktivitātes līmenisunantioksidantu aktivitātesnekā tās izejvielas, jo tajā ir vērtīgi bagātināti savienojumi (28.

Noklikšķiniet šeit, lai iegūtu vairāk informācijas par Cistanche antioksidantu aktivitāti

Mēs izmantojām metabolomikas pieeju rīsu koji, kas raudzēti ar divām dažādām pavedienu sēnēm, kas noskaidroja būtiskas atšķirības fermentu aktivitātē, metabolītu ražošanā un bioaktivitātē. Dažādu enzīmu, piemēram, a-amilāzes, &glikozidāzes un -glikozidāzes, ko ražo inokulētais A. cristatus un A. oryzae, aktivitātes palielinājās līdz ar fermentācijas laiku (3. attēls). Tā kā šie fermenti noārda arabinoksilāna struktūru, abos paraugos no rīsu šūnu sienas tika atdalītas dažādas fenola skābes, kā parādīts 2. attēlā. Šīs fenolskābes ir potenciāli antioksidanti, kas mazina oksidatīvo stresu 291. Tādējādi antioksidantu aktivitātes un TPC tests palielinājās fermentācijas laika palielināšanās, jo tika palielināts fenolskābes saturs (2. un 4. attēls) Jo īpaši RAC ir augstāks flavonoīdu saturs nekā RAO, jo tajā ir augstāks glikozidāzes līmenis, kas hidrolizē glikozīdu saiti no rīsu šūnu sienas. A. cristatus augšana rīsu kodži. Papildus atdalīšanai no rīsu šūnu sienas glikozidāze hidrolizē flavonoīdu glikozīda formu līdz aglikona formai, kurai piemīt augstāka antioksidanta aktivitāte 30]. Palielināta flavonoīdu glikozīda forma un aglikona forma palielina antioksidantu aktivitātes, piemēram, ABTS, DPPH FRAP un TFC, kas var ietekmēt RAC antioksidantu aktivitāti, kā parādīts korelācijas tīkla kartē (4. attēls). Šī parādība tika novērota arī iepriekšējā pētījumā, kas parādīja glikozīdu izoflavonu biotransformāciju par aglikoniem un antioksidantu aktivitātes palielināšanos atbilstoši mentācijas laikam sojas pupiņās, kas fermentētas ar. cristatus [311.

RAO ir augstāks a-glikozidāzes aktivitātes līmenis, kas sašķeļ a-glikozīdu saites un autoģenerē augstāku glikozes saturu. Papildus tam, ka glikoze ir galvenais sēnīšu oglekļa avots, RAC glikozes līmenis pazeminājās pēc fermentācijas, jo to izmantoja sekundāro metabolītu, piemēram, auroglaucīna atvasinājumu, sintēzei, kas ir atšķirīgi pigmenta savienojumi, ko ražo A. cristatus, nevis A. oryzne. Iepriekšējie pētījumi ir ziņojuši, ka auroglaucīna atvasinājumiem ir aktivitāte DPPH, un tie tiek uzskatīti par potenciāliem antioksidantu savienojumiem [32]. Turklāt sabrukusī rīsu šūnu siena varētu ļaut fermentiem iekļūt rīsu visdziļākajās daļās [24]. Tādējādi arvien vairāk metabolītu varēja brīvi ekstrahēt bez pārtraukuma no rīsu ārējās sienas.

Korelācijas tīkla kartē starp RAO un RAC bioaktivitātēm un metabolītiem (4. attēls) kopējās tendences bija tādas, ka flavonoīdi, organiskās skābes, cukura atvasinājumi un taukskābes tika ierosinātas kā potenciālie bioaktivitātes veicinātāji. Flavonoīdi un fenolskābes ir slaveni antioksidanti, un tiem ir daudz priekšrocību attiecībā uz dažādām funkcijām. Pateicoties spējai mazināt oksidatīvo stresu, tos izmanto, lai uzlabotu pārtikas kvalitāti un uzlabotu ādas novecošanos [33]. Turklāt iepriekšējā pētījumā ziņots, ka taukskābes un antioksidanti var radīt sinerģisku efektu ādas novecošanās profilaksei un pārvaldībai [34].

No otras puses, auroglaucīns un lizofosfolipīdu atvasinājumi kalpo kā papildu metabolītu veicinātāji RAC [35]. Auroglaucīna atvasinājumiem ir antioksidanta iedarbība, kā minēts iepriekš, un tāpēc mēs pieņemam, ka tie spēj pārtraukt brīvo radikāļu ķēdes reakcijas, lai mazinātu ādas stresu. Yahagi et al. pierādīja, ka lizofosfolipīdi var uzturēt ādas mitrināšanu, uzlabojot faktoru izpausmi, kas saistīti ar ādas barjeru un hidratācijas funkcijām ādā [36]. Mitrināšana ir būtisks veselīgas ādas faktors, jo sausums izraisa ādas bojājumus, kam raksturīgs raupjums, zvīņaina āda un smalkas krunciņas [37,38]. Mēs aprēķinām, ka auroglaucīnam un lizofosfolipīdiem ir labāka ādas pretnovecošanās iedarbība pēdējā fermentācijas stadijā RAC nekā RAO. Zhao et al. parādīja, ka Fuzhuan ķieģeļu tēja, kas satur dominējošo sēnīti A. cristatus, var kavēt fotonovecošanos, dzēšot ROS un iedarbinot Nrf2 signālu kaskādes [21]. Tāpēc mēs pieņemam, ka RAC piedāvā lielāku pretnovecošanās potenciālu nekā RAO, iedarbojoties pa netiešiem ceļiem, piemēram, radot labākus ādas apstākļus bagātīgam mitrumam unbrīvo radikāļu stresa mazināšana.

Kopumā mēs uzskatām, ka uzlabotās taukskābes, fenolskābes, flavonoīdi, lizofosfolipīdi un hidrohinoni var palielināt antioksidantu aktivitāti un uzlabot elastīna un kolagēna RNS ekspresiju, kā arī nomākt MMP{0}} RNS ekspresiju. fermentācija. Šie savienojumi uzrādīja dažādus metabolītu izmaiņu modeļus atkarībā no inokulāta sēnītes un ietekmēja dažādas bioaktivitātes. Šajā pētījumā tika noskaidrota vispārējā metabolisma atšķirība starp dažādām vienas Aspergillus ģints sugām, izmantojot metabolomikas pieeju. Turklāt dažādas enzīmu aktivitātes ietekmēja dažādu metabolītu veidošanos un izraisīja dažādas bioaktivitātes RAO un RAC.

4. Materiāli un metodes

4.1. Ķīmiskās vielas un reaģenti

4.2. Paraugu sagatavošana un ekstrakcija

Koji veidnes A. oryzae KCCM 11372 (Korejas Mikroorganismu kultūras centrs, KCCM; Korejas Republika) un A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF no Cosmax BTI R&I centra; Seongnam, Koreja) tika izmantotas rīsu fermentācijai un atsevišķi inokulētas. . Katrs mikroorganisms tika uzturēts uz iesala ekstrakta agara (iesala ekstrakts, 20 g; glikoze, 20 g; peptons, 1 g; agars, 20 g/l) 28 ◦C temperatūrā. Koji ražošanas fermentācijas posmu bioprocess tika pielāgots no Lee et al. [11]. Rīsu koji paraugi, kas fermentēti ar A. oryzae un A. cristatus, tika novākti ik pēc 2 dienām (no 0. līdz 8. dienai) un tika uzglabāti dziļās sasaldēšanas apstākļos (–80 ◦C) līdz turpmākajām analīzēm. Visi paraugi tika sagatavoti ar diviem bioloģiskiem atkārtojumiem.

Rīsu kodži parauga ekstrakcijas metode tika pielāgota no Lee et al. ar nelielām izmaiņām [11]. Īsumā, pulverizētos liofilizētos rīsu kodži paraugus (5 g) ekstrahēja, pievienojot 80 procentus ūdens etanola (40 ml) un maisot uz orbitālā kratītāja (200 apgr./min 24 stundas) istabas temperatūrā. Pēc paraugu centrifugēšanas ar ātrumu 10, 000 apgr./min 5 minūtes 4 ◦C temperatūrā supernatanti tika filtrēti ar 0,22 µm Millex GP filtru (Merck Millipore, Billerica, MA, ASV). Filtrētos paraugu ekstraktus žāvēja, izmantojot ātruma vakuuma koncentratoru (Hanila, Seula, Koreja), un tika izmērīts sauss svars, lai novērtētu ekstrakcijas ražu.

4.3. GC–TOF–MS analīze

Ekstrahēto rīsu koji paraugu atvasināšanas soļi bija tādi, kā aprakstīja Lee et al. [11]. GC–TOF–MS analīze tika veikta ar Agilent 7890A GC sistēmu (Santa Clara, CA, ASV) ar Pegasus HT TOF-MS (Leco Corporation, St. Joseph, MI, ASV). Nesējgāze (hēlijs) tika izmantota ar RTx-5MS (30 m garums × 0,25 mm iekšējais diametrs, J&W Scientific, Folsoma, Kalifornija, ASV) ar nemainīgu plūsmas ātrumu 1,5 ml/min. Inžektora un jonu avota temperatūra tika uzturēta attiecīgi 250 un 230 ◦C. Cepeškrāsns temperatūru uzturēja 75 ◦C 2 minūtes un pēc tam paaugstināja līdz 300 ◦C pie 15 ◦C/min, kas tika uzturēta 3 minūtes. Pēc tam tika ievadīts 1 µL parauga ar masas skenēšanas diapazonu m/z 50–800. Visas paraugu analīzes tika veiktas ar trim analītiskajiem atkārtojumiem.

4.4. UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS analīze

Ekstrahētie rīsu koji paraugi tika analizēti, lai noteiktu sekundāros metabolītus, izmantojot īpaši augstas veiktspējas šķidruma hromatogrāfijas lineāro kvadrupola orbitrap tandēma masas spektrometriju (UHPLC-LTQ-Orbitrap-MS/MS), izmantojot protokolus, ko aprakstīja Kwon et al. [39]. Katrs paraugs tika atdalīts, izmantojot Phenomenex KINETEX® C18 kolonnu (100 mm 2, 1 mm, 1, 7 m daļiņu izmērs; Torrance, CA, ASV). Masas spektri un fotodiodes masīva diapazons gan pozitīvo, gan negatīvo jonu režīmos tika noregulēti attiecīgi m/z 100–1000 un 200–600 nm.

4.5. Datu apstrāde un statistiskā analīze

Neapstrādāti GC–TOF–MS un UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS dati tika pārveidoti netCDF (*.cdf) formātā, izmantojot attiecīgi Leco ChromaTOF un Thermo Xcalibur programmatūru. Attiecīgie neto CDF (*.cdf) faili tika pakļauti MetAlign (piekļuve 13. jūlijā, 2. jūlijā021)) ar programmatūras starpniecību, izmantojot Lī et al. aprakstītos protokolus. [11,24]. Masu spektrometriskie dati, kas atspoguļo piemēroto maksimālo masu (m/z), aiztures laiku (min) un pīķa laukuma informāciju kā mainīgos, tika novērtēti, izmantojot SIMCA-P plus 12.{13}} programmatūru (Umetrics, Umea, Zviedrija) daudzfaktoru statistiskai analīzei. Pirms galveno komponentu analīzes (PCA), daļējo mazāko kvadrātu diskriminācijas analīzes (PLS-DA) un ortogonālās daļējās mazāko kvadrātu diskriminācijas analīzes (OPLS-DA), datu kopas tika pārveidotas logaritmiski un tika mērogota vienību dispersija, lai salīdzinātu rīsu koji. raudzēts ar dažādām sēnītēm. PASW Statistics 18 (SPSS, Inc., Čikāga, IL, ASV) tika izmantota, lai pārbaudītu būtiskas atšķirības (p vērtība < 0,05) ar vienvirziena dispersijas analīzi un aprēķinātu korelācijas koeficienta vērtības. korelācijas kartei. Korelācijas tīkla karte starp metabolītiem, kuru Pīrsona korelācijas koeficienta vērtība ir lielāka par 0, 5, un bioaktivitātēm tika izveidota, izmantojot programmatūru Cytoscape (//www.cytoscape.org/ (piekļuve 2021. gada 13. jūlijā)). Provizorisko metabolītu identificēšana tika veikta, saskaņojot molekulmasu un molekulāro sastāvu, aiztures laiku, masas fragmentu

modeļus un ultravioleto (UV) datu absorbciju no literatūras un mūsu iekšējās bibliotēkas

4.6. Enzīmu aktivitāšu noteikšana

Amilāzes, glikozidāzes un glikozidāzes enzīmu aktivitātes testi tika veikti saskaņā ar iepriekšējiem pētījumiem [25, 40, 41]. 10 g katra rīsu kodži parauga tika ekstrahēts 90 ml ūdens, kratot orbitālajā kratītājā 120 pm un 25 ◦ C 1 stundu. Pēc paraugu filtrēšanas supernatanti tika izmantoti, lai novērtētu fermentu aktivitātes.

4.7. Antioksidantu aktivitāšu un kopējā fenola un flavonoīdu satura noteikšana

Lai noteiktu rīsu koji paraugu antioksidantu aktivitāti, trīs eksemplāros tika veikti ABTS, DPPH, dzelzs reducējošo antioksidantu jaudas (FRAP), kopējā fenola satura (TPC) un kopējā flavonoīdu satura (TFC) testi.

ABTS un FRAP testi tika veikti, izmantojot metodi, ko aprakstīja Lee et al. [24]. Īsumā, ABTS izejas šķīdums, kas atšķaidīts ar destilētu ūdeni, lai sasniegtu galīgo absorbciju 0,7 ± 0.02 pie 750 nm (180 µL) pievieno katram parauga ekstraktam (20 µL) 96-iedobes plāksnē. Reakcijai ļāva notikt 6 minūtes tumsā istabas temperatūrā. Absorbcija tika mērīta pie 750 nm, izmantojot spektrofotometru. FRAP testam maisījums no 300 mM acetāta buferšķīduma (pH 3,6), 20 mM dzelzs (III) hlorīda un 10 mM 2,4,6-tripiridil-S-triazīna (TPTZ) šķīduma 40 mM HCl. (10:1:1, v/v/v). Paraugu (10 µL) sajauca ar 300 µL FRAP reaģenta un inkubēja istabas temperatūrā 6 minūtes. Absorbcija tika mērīta pie 570 nm. DPPH tests tika veikts, izmantojot metodi, kas pielāgota no Won et al. [42], kur 180 µL DPPH izejas šķīduma (0,2 mM etanolā) tika sajaukti ar 20 µL rīsu kodži ar diviem dažādiem sēnīšu ekstraktiem 96-iedobju plāksnēs un ļāva reaģēt 20 minūtes istabas temperatūrā. tumsā. DPPH brīvo radikāļu absorbcija tika mērīta pie 515 nm. ABTS, FRAP un DPPH rezultāti ir attēloti kā Trolox ekvivalentā antioksidanta jaudas (TEAC) koncentrācija (mM) uz miligramu koji. Standarta koncentrācijas līknes svārstījās no 0,0078 mM līdz 1 mM TEAC.

TFC un TPC testiem metode, ko izmantoja Lī et al. [25] sekoja. TFC testam 20 µL katra rīsu kodži parauga tika sajaukti ar 20 µL 1 N NaOH un 180 µL 90 procentu dietilēnglikola. 96-akas plāksne. Pēc maisījuma inkubācijas 60 minūtes istabas temperatūrā absorbcija tika mērīta pie 405 nm. TFC tiek parādīts kā naringīna ekvivalenta (NE) koncentrācija (mM) uz miligramu koji. Standarta koncentrācijas līkne bija lineāra starp 0,0027 un 0,3445 mM NE. Lai analizētu TPC testu, 20 µL katra parauga tika inkubēti ar 100 µL 0,2 N Folin-Ciocalteu reaģenta 96-iedobju plāksnēs istabas temperatūrā 6 minūtes. Pēc tam maisījumam pievienoja 80 µL 7,5 procentu nātrija karbonāta (Na2CO3) šķīduma un ļāva reaģēt 60 minūtes istabas temperatūrā. Visbeidzot, absorbcija tika novērtēta pie 750 nm. Rezultāti ir norādīti kā gallskābes ekvivalenta (GE) koncentrācija (mM) uz miligramu koji standarta koncentrācijas diapazonā no 0,0230 līdz 2,9391 mM GE.

4.8. Šūnu kultūras

4.9. Reāllaika polimerāzes ķēdes reakcija

Lai izolētu un kvantitatīvi noteiktu kopējo RNS no šūnu granulām, tika izmantots Trizol reaģents, un analīze tika veikta, izmantojot spektrofotometru. cDNS sintēze tika veikta kopējā reakcijas tilpumā 20 µL; reakcijas maisījums sastāvēja no 2 µg kopējās RNS, oligo (dT) un reversās transkripcijas premiksa šādos reakcijas apstākļos: 45 ◦ C 45 minūtes, kam sekoja 95 ◦ C 5 minūtes. RT-PCR tika izmantots gēnu ekspresijas kvantitatīvai noteikšanai, un rezultāti pēc tam tika analizēti, izmantojot StepOne PlusTM sistēmas programmatūru (Applied Biosystems, Foster City, CA, ASV). RT-PCR amplifikācijas tika veiktas, izmantojot SYBR Green PCR Master Mix ar iepriekš sajauktu ROX (Applied Biosystems, Foster City, CA, ASV) un primerus (Bioneer, Daejeon, Korea) ABI 7300 instrumentā, ievērojot ražotāja protokolu. Reakcijas apstākļi bija šādi: ierosināšana 95 ◦ C 10 minūtes, kam sekoja cikla apstākļi 95 ◦ C 15 s, 60 ◦ C 30 s un 72 ◦ C 30 s 40 cikliem. -aktīns tika izmantots kā iekšējā kontrole.

Visbeidzot, rīsu koji parādīja dažādu metabolītu un bioaktivitātes veidošanos atbilstoši dažādām izmantotajām Aspergillus sugām. Augstāki līmeņiflavonoīdiun auroglaucīna atvasinājumi RAC izraisīja augstākuantioksidanta aktivitātenekā RAO. Turklāt sinerģiskā iedarbība taukskābju unantioksidantu savienojumiatrasti gan koji bija saistīti ar RNS ekspresijuādas pretnovecošanās faktors. Auroglaucīna atvasinājumi un lizofosfolipīdi, kas atrasti RAC, arī bija kandidāti, kurus varētu saistīt arĀdas pretnovecošanās faktoru RNS ekspresija. Tāpēc, lai gan rīsu koji fermentē, izmantojot vienas ģints (Aspergillus) pārstāvjus, dažādu sugu enzīmu aktivitātēs un metabolītos ir būtiskas atšķirības, un tās ietekmēbioaktivitātespiemēram,antioksidantsunpretnovecošanās aktivitātes. Tādējādi šis pētījums sniedz visaptverošu ieskatu, kā arī loģiku inokulācijas mikrobu racionālai izvēlei attiecībā uz

metabolomika, lai uzlabotu koji komerciālās ražošanas kvalitāti.

Papildu materiāli:Tiešsaistē S1 attēlā ir pieejami šādi dati: PLS-DA punktu grafiks (A, B) un OPLS-DA punktu grafiks (C) rīsiemkojiraudzēts arAspergillus cristatusvaiA. oryzaetika iegūti no UHPLC–LTQ–Orbitrap MS/MS (A, C) un GC–TOF–MS (B)., S1 tabula: ievērojami atšķirīgu rīsu metabolītu saraksts.kojiar dažādiemAspergillus spp. fermentācijas laikā, ko identificē ar UHPLC-LTQ-Orbitrap-MS/MS, S2 tabula: ievērojami atšķirīgu rīsu metabolītu sarakstskojiar dažādiemAspergillus spp. fermentācijas laikā, ko identificē ar GC-TOF-MS, S2 attēls: bioaktivitātes (ādas šūnu efekts un antioksidanta aktivitāte) un rīsu korelācijas kartekojiraudzēts arAspergillus cristatusvaiA. oryzaemetabolīti atbilstoši Pīrsona korelācijas koeficientam. Katrs kvadrāts norāda Pīrsona korelācijas koeficienta vērtības (r).

Autora ieguldījums:Konceptualizācija, CL un SL; metodoloģija, HL, SL, SK (Seoyeon Kyung) un JR; validācija, HL, SL un SK (Seoyeon Kyung); formālā analīze, HL un SK (Seoyeon Kyung); izmeklēšana, HL un SL; resursi, JR, SK (Seunghyun Kang) un MP; rakstīšana — oriģinālā uzmetuma sagatavošana, HL; rakstīšana — pārskatīšana un rediģēšana, HL un SL; vizualizācija, HL; uzraudzība, SL un CL; projektu administrācija, SK (Seunghyun Kang), MP un CL; finansējuma iegūšana, CL Visi autori ir izlasījuši un piekrīt publicētajammanuskripta versija.

Finansējums:Šo darbu atbalstīja Korejas Pārtikas, lauksaimniecības un mežsaimniecības tehnoloģiju plānošanas un novērtēšanas institūts (IPET), izmantojot Lauksaimniecības mikrobiomu pētniecības un attīstības programmu (Stratēģiskā iniciatīva mikrobiomiem lauksaimniecībā un pārtikā), ko finansēja Lauksaimniecības, pārtikas un lauku ministrija. Lietas (MAFRA) (dotācijas numurs 918011-04-3-HD020). Turklāt šo darbu atbalstīja Korejas Pārtikas, lauksaimniecības, mežsaimniecības tehnoloģiju plānošanas un novērtēšanas institūts (IPET), izmantojot Augstas pievienotās vērtības pārtikas tehnoloģiju attīstības programmu, ko finansēja Lauksaimniecības, pārtikas un lauku lietu ministrija (MAFRA). (dotācijas numurs 318027-04-3-HD030)

Paziņojums par datu pieejamību:Šajā pētījumā sniegtie dati ir pieejami pēc pieprasījuma noatbilstošais autors

Pateicības:Šo pētījumu atbalstīja Konkuk universitātes pētnieku fonds2020.

Atsauces

1. Sanljē, N.; Gokcen, BB; Sezgin, AC Raudzētas pārtikas ieguvumi veselībai. Krit. Rev. Food Sci. Nutr. 2019, 59, 506–527. [CrossRef]

2. Yu, K.-W.; Lī, S.‑E.; Choi, H.‑S.; Sū, HJ; Ra, KS; Choi, JW; Hvangs, J.-H. Optimizācija rīsu kodži pagatavošanai, izmantojot Aspergillus oryzae CJCM-4, kas izolēts no tradicionālā korejiešu meju. Food Sci. Biotehnoloģija. 2012, 21, 129–135. [CrossRef]

3. Yang, Y.; Sja, Y.; Līns, X.; Van, G.; Džans, H.; Sjons, Z.; Jū, H.; Yu, J.; Ai, L. Ķīniešu rīsu vīna garšas profilu uzlabošana, izveidojot raudzējošu raugu ar izcilu etanola toleranci un fermentācijas aktivitāti. Food Res. Int. 2018, 108., 83.–92. [CrossRef] [PubMed]

4. Ičikava, E.; Hirata, S.; Hata, Y.; Jazava, H.; Tamura, H.; Kaneoke, M.; Ivašita, K.; Hirata, D. Koji startera ietekme uz metabolītiem japāņu alkoholisko dzērienu sakē, kas izgatavots no sake rīsiem Koshitanrei. Biosci. Biotehnoloģija. Biochem. 2020, 84, 1714–1723. [CrossRef]

5. Phetpornpaisan, P.; Tippayavat, P.; Džejs, M.; Sutthanut, K. Vietējās Taizemes šķirnes lipīgās melnās rīsu klijas: funkcionālu savienojumu avots imūnmodulācijā, šūnu dzīvotspējā un kolagēna sintēzē, kā arī matricas metaloproteināzes-2 un -9 inhibīcijā. J. Funkcija. Foods 2014, 7, 650–661. [CrossRef]

6. Kima, AJ; Choi, JN; Kims, Dž.; Kima, HY; Parks, SB; Jā, SH; Choi, JH; Liu, KH; Lee, CH Aspergillus celmu fermentēto rīsu kodži metabolītu profilēšana un bioaktivitāte. J. Microbiol. Biotehnoloģija. 2012, 22, 100–106. [CrossRef] [PubMed]

7. Eimss, BN; Šigenaga, MK; Hagen, TM Oksidanti, antioksidanti un novecošanās deģeneratīvas slimības. Proc. Natl. Akad. Sci. ASV 1993, 90, 7915–7922. [CrossRef] [PubMed]

8. Vaļko, M.; Leibfrics, D.; Moncol, J.; Kronina, MT; Mazurs, M.; Telser, J. Brīvie radikāļi un antioksidanti normālu fizioloģisko funkciju un cilvēku slimību gadījumā. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2007, 39, 44–84. [CrossRef]

9. Utara, B.; Singhs, AV; Zamboni, P.; Mahajan, RT Oksidatīvais stress un neirodeģeneratīvās slimības: pārskats par augšup un pakārtotajām antioksidantu terapijas iespējām. Curr. Neirofarmakols. 2009, 7, 65–74. [CrossRef]

10. Yen, G.-C.; Chang, Y.-C.; Su, S.-W. Ar Aspergillus candidus raudzētu rīsu kodži antioksidanta aktivitāte un aktīvie savienojumi. Food Chem. 2003, 83, 49–54. [CrossRef]

11. Lī, DE; Lī, S.; Sings, D.; Jang, ES; Shin, HW; Mēness, BS; Lī, CH Laika izšķirtspējas salīdzinoši metabolomi Kodži fermentācijai ar brūnajiem, baltajiem un milzu embriorīsiem. Food Chem. 2017, 231., 258.–266. [CrossRef] [PubMed]

12. Džarārs, M.; Bīls, S.; Šahīns, N.; Fatima, A.; Nasab, R. Retinola un alfa hidroksiskābes pretnovecošanās ietekme uz mākslīgi fotonovecojušo cilvēka ādas fibroblastu šūnu līniju elastīna šķiedrām. Int. J. Med Health Biomed. Pharm. Inž. 2015, 7, 328.

13. Bolla, SR; Al-Subaie, AM; Al-Jindan, RY; Balakrishna, JP; Ravi, PK; Veeraraghavan, VP; Pillai, AA; Gollapalli, SSR; Jāzeps, JP; Surapaneni, KM Aristolochia saccata metanola lapu ekstrakta brūču dzīšanas spēju in vitro, iespējams, veicina tā stimulējošā iedarbība uz kolagēna -1 ekspresiju. Heliyon 2019, 5, e01648. [CrossRef] [PubMed]

14. Meinke, MC; Nowbary, CK; Šancers, S.; Vollerts, H.; Lademans, J.; Darvin, ME Iekšķīgi lietojama, ar karotinoīdiem bagāta cirtainu kāpostu ekstrakta ietekme uz ādas kolagēna I/elastīna indeksu. Uzturvielas 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. Majeed, M.; Bhat, B.; Anands, S.; Sivakumars, A.; Palivals, P.; Geetha, KG UV izraisītu ROS un kolagēna bojājumu kavēšana ar Phyllanthus emblica ekstraktu normālos cilvēka ādas fibroblastos. J. Kosmētika. Sci. 2011, 62, 49–56. [PubMed]

16. Masuda, M.; Murata, K.; Naruto, S.; Uveja, A.; Isami, F.; Matsuda, H. Matricas metaloproteināzes-1 inhibējošās aktivitātes Morinda citrifolia sēklu ekstraktam un tā sastāvdaļām UVA apstarotos cilvēka dermas fibroblastos. Biol. Pharm. Bullis. 2012, 35, 210–215. [CrossRef] [PubMed]

17. Seo, Y.-K.; Jungs, S.-H.; Dziesma, K.-Y.; Park, J.-K.; Park, C.-S. Fermentētu rīsu kliju ekstrakta pretfotonovecošanās iedarbība uz UV izraisītiem normāliem ādas fibroblastiem. Eiro. Food Res. Tehn. 2010, 231., 163.–169. [CrossRef]

18. Goufo, P.; Trindade, H. Rīsu antioksidanti: fenola skābes, flavonoīdi, antocianīni, proantocianidīni, tokoferoli, tokotrienoli, orizanols un fitīnskābe. Food Sci. Nutr. 2014, 2, 75–104. [CrossRef]

19. Bechman, A.; Filips, RD; Chen, J. Rīsu un miežu kodži izvēlēto fizisko īpašību un fermentu aktivitātes izmaiņas fermentācijas un uzglabāšanas laikā. J. Pārtika. Sci. 2012, 77, M318–M322. [CrossRef]

20. Kangs, D.; Su, M.; Duans, Y.; Huang, Y. Eurotium cristatum, potenciālā probiotiskā sēne no Fuzhuan ķieģeļu tējas, mazināja aptaukošanos pelēm, modulējot zarnu mikrobiotu. Pārtikas funkcija. 2019, 10, 5032–5045. [CrossRef]

21. Žao, P.; Alam, MB; Lee, SH Aizsardzība pret UVB izraisītu fotonovecošanos ar Fuzhuan-Brick tējas ūdens ekstraktu, izmantojot MAPK/Nrf2- Mediated Down-Regulation of MMP-1. Uzturvielas 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

22. Hur, SJ; Lī, SY; Kima, YC; Čoi, I.; Kim, GB Fermentācijas ietekme uz antioksidantu aktivitāti augu izcelsmes pārtikas produktos. Food Chem. 2014, 160., 346.–356. [CrossRef] [PubMed]

23. Džou, S.-D.; Sju, X.; Lin, Y.-F.; Xia, H.-Y.; Huangs, L.; Dongs, M.-S. Tiešsaistes skrīnings un brīvo radikāļu attīrīšanas savienojumu identificēšana Angelica dahurica, kas fermentēta ar Eurotium cristatum, izmantojot HPLC-PDA-Triple-TOF-MS/MS-ABTS sistēmu. Food Chem. 2019, 272, 670–678. [CrossRef] [PubMed]

24. Lī, S.; Lī, DE; Sings, D.; Lee, CH Metabolmics atklāj optimālu graudu pirmapstrādi (malšanu) rīsu kodži fermentācijai. J. Agric. Food Chem. 2018, 66, 2694–2703. [CrossRef]

Jautājiet vairāk:

E-pasts:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: plus 86 15292862950